DOI: http://dx.doi.org/10.18273/revion.v28n2-2015003
Nestor Andres Jaimes Villarreal*; Viatcheslav Kafarov**
Centro de Investigación para el Desarrollo Sostenible en Industria y Energía (CIDES). Escuela de Ingeniería
Química. Universidad Industrial de Santander (UIS), Carrera 27 Calle 9, Bucaramanga, Colombia.
*nestorjaimes86@gmail.com, **kafarov@uis.edu.co
Fecha Recepción: 24 de febrero de 2015
Fecha Aceptación: 09 de junio de 2015
Diversos estudios sobre el cultivo de microalgas a escala laboratorio y piloto han registrado el potencial de estos microorganismos para la producción de materia prima en la elaboración de biocombustibles. El suministro de una fuente de carbono para el cultivo masivo de microalgas representa una de las principales limitantes en el proceso productivo; estas fi jan fotosintéticamente carbono inorgánico (CO2) y sintetizan metabolitos para la producción de biocombustibles. En el presente estudio se evaluó la infl uencia de diversos parámetros de suministro de CO2 sobre cultivos de la especie Botryococcus braunii en fotobiorreactores a escala laboratorio. Se plantearon diseños experimentales centrales compuestos para correlacionar los parámetros a evaluar y determinar su efecto en la dilución de CO2 y producción de metabolitos (biomasa, lípidos e hidrocarburos). Respecto a los parámetros de diseño del fotobiorreactor, alturas > 36cm, diámetros < 7cm y pequeños tamaños de burbuja ayudan a incrementar la dilución del CO2 hasta en 180%. Se encontró que altas concentraciones de CO2 (> 0,06v/vm) suministrado de manera continua son ideales para el crecimiento celular. Por otra parte, concentraciones medias (0,04 - 0,06v/vm) de CO2 son ideales para la producción de lípidos y concentraciones bajas de CO2 (≤ 0,02v/vm) favorecen la producción de hidrocarburos. Se validó el potencial de la cepa de B. braunii colombiana para la producción de biodiésel gracias a sus altas tasas de síntesis de lípidos.
Palabras clave: microalgas, botryococcus braunii, CO2 , fotobiorreactor, lípidos, hidrocarburos.
Several studies about the cultivation of microalgae in laboratory and pilot scale have recorded the potential of these microorganisms for the production of raw material in the fabrication of biofuels. The provision of a carbon source for the mass cultivation of microalgae is one of the main constraints in the production process; these photosynthetically fi xed inorganic carbon (CO2) and synthesized metabolites for biofuel production. In the present study the infl uence of various parameters of CO2 supply over Botryococcus braunii crops in laboratory scale photobioreactors was evaluated. Central composite experimental designs were proposed to correlate the parameters and determine their effect on the dilution of CO2 and production of metabolites (biomass, lipids and hydrocarbons). Regarding design parameters of the photobioreactor, heights > 36cm, diameter < 7cm and small bubble sizes help increase CO2 dilution up to 180%. It was found that high concentrations of CO2 (> 0.06v/vm) continuously supplied are ideal for cell growth. Moreover, medium concentrations of CO2 (0.04 - 0.06v/vm) are ideal for the production of lipids and low concentrations of CO2 (< 0.02v/vm) is ideal for the production of hydrocarbons. The potential of the Colombian B. braunii strain for biodiesel production was validated thanks to its high lipid synthesis.
Keywords: microalgae, botryococcus braunii, CO2 , photobioreactor, lipids, hydrocarbons.
Estudos sobre o cultivo de microalgas em escala laboratorial e piloto tem sido o potencial para o cultivo desses microorganismos para a produção de matéria-prima na produção de biocombustíveis. Fornecer uma fonte de carbono para o cultivo em massa de microalgas representa um dos principais constrangimentos no processo de produção; estas fotossinteticamente fixar carbono inorgânico (CO2) e sintetizam metabólitos para a produção de biocombustíveis. O presente estudo avaliou a influência de diferentes parâmetros de fornecimento de CO2 nas culturas da espécie Botryococcus braunii em fotobiorreatores à escala laboratorial. Composto Central projetos experimentais foram propostos para correlacionar os parâmetros para avaliar e determinar o seu efeito sobre a diluição de CO2 e produção de metabólitos (biomassa, lipídios e hidrocarbonetos). Em relação aos parâmetros de projeto da fotobiorreator, alturas > 36cm, diâmetro < 7cm e tamanhos pequenos da bolha ajudam a aumentar a diluição de CO2 até 180%. Verificou que altas concentrações de CO2 (> 0,06v/vm) fornecido continuamente são ideais para o crescimento de células. Por outro lado, média de concentrações (0,04 - 0,06v/vm) de CO2 são ideais para a produção de lipídios e baixas concentrações de CO2 (≤ 0,02v/vm) favorecem a produção de hidrocarbonetos. Validada a tensão potencial de B. braunii colombiano para a produção de biodiesel, devido a suas altas taxas de síntese de lipídios.
Palabras-chave: microalgas, botryococcus braunii, CO2 , fotobiorreator, lipídios e hidrocarbonetos.
Cita: Jaimes Villareal NA, Kafarov V. Desarrollo preliminar de una metodología de suministro de CO2 a cultivos de Botryococcus Braunii para la producción de biocombustibles. rev.ion. 2015;28(2):33-50.
El consumo de energía y el progreso de nuevas
economías está sustentado por los combustibles
fósiles, principales materias primas energéticas
las cuales no son renovables y liberan dióxido
de carbono (CO2) a la atmósfera durante su
quema, contribuyendo así al calentamiento
global [1]. Estos combustibles son actualmente
la fuente más importante de energía debido a su
fácil disponibilidad, estabilidad y alta densidad
energética [2].
En los últimos años se han hecho diversos intentos
respecto a la fijación biológica de CO2 usando
las microalgas [3], un grupo de microorganismos
fotosintéticos unicelulares o multicelulares simples
que necesitan dos cosas fundamentales para
crecer, una es la fuente de carbono (normalmente
en forma de CO2), y la otra es una fuente de
energía, en este caso la luz [4-6]. Esta fijación
biológica ha recibido considerable atención ya que
permite la producción de energía de biomasa a
través del proceso de fijación de CO2 mediante la
fotosíntesis [7,8].
Las microalgas poseen una alta tasa de
crecimiento, siendo entre 10 a 50 veces más
eficientes en fijación de CO2 que las plantas
terrestres [9], además de requerir menor energía
para la elaboración de biomasa [10]. Sus
estructuras biológicas destinadas principalmente
a la conversión de energía y su configuración
primitiva (carecen de raíces, tallos y hojas)
les permite adaptarse a diversas condiciones
ambientales y prosperar en el largo plazo [11].
Así, bajo condiciones climáticas adecuadas
y con suficientes nutrientes, las microalgas
pueden duplicar su biomasa dentro de 24 horas
o hasta 3,5 horas durante la fase de crecimiento
exponencial, dependiendo principalmente de la
cepa utilizada [12].
De acuerdo con la literatura, el suministro de
carbono para el cultivo masivo de microalgas
representa la principal limitante [13,14]; el CO2 se
disocia como ácido carbónico en medio acuoso,
afectando el pH del medio de cultivo lo que influye
directa e indirectamente en el metabolismo de las
microalgas [15]. Entonces puede existir inhibición
del cultivo cuando se usan fracciones molares altas
de CO2 y/o limitación de nutrientes cuando se usan
bajas fracciones molares de CO2 [16]. Por otra parte,
las actuales tecnologías para la transferencia del
CO2 en cultivos microalgales sufren de ineficiencias
en la transferencia de masa del CO2 desde la fase
gaseosa a la líquida [13,14], además la eficiencia
de captura o fijación del CO2 en sistemas de cultivo
cerrado depende principalmente de la especie de
microalga, la concentración del CO2 y el diseño del
fotobiorreactor [17].
Botryococcus braunii Kützing
Las microalgas están presentes en todos los
ecosistemas existentes de la tierra, no sólo acuático
sino también terrestre, lo que representa una gran
variedad de especies que viven en una amplia gama
de condiciones ambientales. Se estima que existen
más de 50.000 especies, pero sólo un número
limitado, de alrededor de 30.000, se han estudiado
y analizado [18]. Dependiendo de las especie
de microalga a cultivar, estás sintetizan diversos
compuestos como lípidos, proteínas, carbohidratos,
azúcares, antioxidantes e hidrocarburos [19,20],
convirtiéndolas en cultivos potenciales en la
obtención de materia prima para diversos tipos
de combustibles renovables como el biodiésel,
metano, hidrógeno, etanol, entre otros [11].
Botryococcus braunii (Chlorophyta,
Botryococcaceae) es una microalga verde
formadora de colonias que produce grandes
cantidades de hidrocarburos líquidos que se
pueden transformar en combustibles para el
transporte [21]. El contenido de hidrocarburos en
B. braunii varía entre 15-80% del peso celular
seco, lo que es mucho mayor que en otros
microorganismos [22]. Debido a su riqueza de
lípidos y a su capacidad para formar floraciones,
a veces perdurables durante muchos años
[23], esta microalga se ha propuesto como una
fuente de combustibles líquidos renovables [24].
Esta alga crece como una colonia de células
individuales adheridas por una matriz compuesta
por hidrocarburos y lípidos inusuales [25]. Dentro
de esta misma especie se pueden reconocer 3
diferentes tipos o “familias”, cada una de éstas
se diferencia por el tipo de hidrocarburos que
produce. El tipo A produce n-alcadienos (C23-C33,
principalmente hidrocarburos dienos y trienos), el
tipo B produce hidrocarburos triterpenos C30-C37
mejor conocidos como botriococenos, y escualenos
metilados C31-C34, en cambio, las tipo L produce
licopodíneos, los cuales son tetraterpenoides
simples [26].
En estudios realizados en cultivos de la cepa de B.
braunii LB-572, se encontró que una concentración
del 2,0%v de CO2 favorece el crecimiento rápido,
resultando en la acumulación de biomasa y
aumento en la producción de hidrocarburos en el
final del período experimental. Más aun, esta cepa
fue capaz de crecer en todas las concentraciones
ensayadas de CO2 en 0,5; 1; y 2%v [27]. Por su
parte, Ge y colaboradores [28] trabajaron con
cultivos de la cepa B. braunii 765, a los cuales
inyectaron altas concentraciones de CO2 del 2, 5,
10 y 20%v en una corriente de gases mezclada con
aire a una taza de 600ml/min, obteniéndose tazas
de crecimiento similares para concentraciones del
2 y del 20%v.
Fotobiorreactores adecuadamente diseñados
pueden reducir el área de cultivo mediante
la distribución vertical de los organismos
fotosintéticos, estos fotobiorreactores tubulares
verticales también aumentan el tiempo de
residencia del CO2 en el medio de cultivo y, en
consecuencia, la eficiencia de utilización de CO2.
Los cultivos también pueden llevarse a cabo
en fotobiorreactores en serie, en los cuales el
efluente de CO2, sin usar un fotobiorreactor, se
utilice para alimentar otro subsecuente [29]. Por
otra parte, diversas ventajas se han encontrado
mediante la variación de los tipos de rociadores
para el burbujeo de CO2 en el fotobiorreactor.
La disminución del tamaño de burbuja desde el
difusor aumenta el coeficiente de transferencia de
masa entre el medio de cultivo y la corriente de
CO2, aumentando la eficiencia de transferencia
hasta en un 500% [30].
Trabajos recientes desarrollados en el Instituto
Colombiano del Petróleo (ICP-ECOPETROL)
han demostrado que gracias a su composición,
B. braunii produce altos rendimientos de bio-oil;
además, las propiedades calóricas también son
mejores que muchos otros materiales biológicos
como los lignocelulósicos. Otras Instituciones de
Educación Superior, como la Universidad Nacional
de Colombia y la Universidad Industrial de
Santander han realizado diversas investigaciones
a escala laboratorio con el fin de evaluar y comparar
el potencial de B. braunii respeto a otras especies.
Por su parte, el Departamento Administrativo de
Ciencia, Tecnología e Innovación, Colciencias,
así como el Ministerio de Agricultura, también han
apoyado la temática con recursos para proyectos
de bioprospección nacional de especies de
microalgas con potenciales para la producción de
biocombustibles.
Con este panorama, y aunque el desarrollo
comercial de las microalgas como fuente de
biomasa para biocombustibles se encuentra lejos
aún, la investigación en este campo, apoyada por
Instituciones público/privadas como Colciencias y
el ICP, es prometedora y está bien sustentada.
Así pues, un estudio de las interacciones entre
las variables de suministro y captura de CO2,
determinantes en el crecimiento y producción
de lípidos y botriococenos (hidrocarburos) en el
alga B. braunni, puede ser de gran valor para el
desarrollo de un sistema viable de producción de
biocombustibles a partir de esta especie. Más aun,
para hacer sostenible técnica y económicamente
el proceso de producción, es necesario realizar
diferentes estudios enfocados en la optimización
de las variables de cultivo y de la productividad
de los mismos mediante el uso de CO2, ya que
estimados indican que el costo de la producción
de biocombustibles es en general 2,3 veces más
alto que aquellos derivados de combustibles
fósiles [31].
Se evaluó el efecto de diversos parámetros de suministro de como fuente de carbono en cultivos de una cepa colombiana de Botryococcus braunii, teniendo como variables de respuesta la concentración de en el medio de cultivo, la producción de biomasa, lípidos e hidrocarburos sintetizados como botriococenos.
Microorganismo Se utilizó la microalga Botryococcus braunii ICP 0001 (tipo B) aislada de un lago ubicado en el municipio de Porce Antioquia en la hacienda Vegas de la Clara de la Universidad de Antioquia - UDEA “San José del Nus” y aislada en el Laboratorio de Transformación de Biomasa del grupo de investigación CIDES de la Universidad Industrial de Santander.
Medio de cultivo La microalga se mantuvo en un medio de cultivo Bold Basal modificado (MBBM). Cada litro de medio de cultivo está compuesto por: macronutrientes (Molar) NaNO3 (2,94x10-3), MgSO4.7H2O (3,04x10-4), NaCl (4,28x10-4), K2HPO4 (4,31x10-4), KH2PO4 (1,29x10-3), CaCl2.2H2O (1,70x10-4) y micronutrientes (g/L) ZnSO4.7H2O (3,07x10-5), MnCl2.4H2O (7,28x10-6), MoO3 (4,93x10-6), CuSO4.5H2O (6,29x10-6), Co(NO3). 2,6H2O (1,68x10-6), H3BO3 (1,85x10-4), EDTA (1,71x10-4), KOH (5,53x10-4), FeSO4.7H2O (1,79x10-5).
Condiciones fotobiorreactor
Las corridas experimentales se llevaron a cabo
en fotobiorreactores con entradas y salidas para
gases. Se suministró puro a los cultivos desde
balas de 10kg de capacidad, fijando la presión con
reguladores y el flujo con rotámetros. Los cultivos
se mantuvieron bajo un ciclo de iluminación de 12h
de luz y 12h de obscuridad utilizando lámparas
fluorescentes de 12W. Con el fin de airear y agitar,
se suministró aire a los cultivos a razón constante
desde bombas de aire.
Método cuantificación de CO2
La concentración de en el medio de cultivo
(medio acuoso) se determinó con un equipo de
titulación digital marca HACH Modelo 16900 con
cartuchos específicos para .
Método cuantificación de biomasa
Se utilizó la metodología de peso seco. Una vez
cada 5 días durante 15 días se tomaron 20mL de
medio de cultivo, los cuales se filtraron utilizando
filtros Whatman GF/C pre-combustionados durante
1h a 100°C. Una vez terminado el proceso de
filtrado, los filtros fueron llevados al horno durante
1 hora a 100°C seguido por 12h en desecador
hasta alcanzar peso constante. Se determinó la
cantidad de biomasa mediante la diferencia de
pesos.
Método cuantificación de hidrocarburos
Se utilizó la metodología descrita por Eroglu
y Melis [32]. Al final de la experimentación se
tomaron 20mL de medio de cultivo, los cuales
se centrifugaron a 3400rpm durante 20min. Al
pellet se le agregaron 5mL de heptano grado
analítico y 5mg de perlas de vidrio de 0,5mm
de diámetro; la mezcla se homogenizó con
vortex a velocidad máxima durante 15 minutos;
transcurrido el tiempo se agregaron 10mL de agua
destilada para separar la biomasa del extracto
de hidrocarburos. Finalmente, cada una de las
muestras fue transferida a las celdas de cuarzo y
se midió la absorbancia a 190nm (cuantificación
de hidrocarburos) en un espectrofotómetro
Spectroquart Pharo 300 (Merck).
Método cuantificación de lípidos
Se utilizó la metodología descrita por Bligh y
Dyer [33]. Al final de la experimentación se
tomaron 20mL de medio de cultivo, los cuales se
centrifugaron a 3400rpm durante 20 minutos. Al
pellet se le agregaron 5,7mL de solución de Bligh
y Dyer y 5mg de perlas de vidrio de 0,5mm de
diámetro; la mezcla se homogenizó con vórtex a
velocidad máxima durante 15 minutos; transcurrido
el tiempo la mezcla se llevó a centrífuga a 3400rpm
durante 15 minutos, el sobrenadante se guardó en
tubos de vidrio de 50mL; el pellet restante se llevó
a una segunda extracción con 5,7mL de solución
y homogenización en vórtex por 5 minutos y
luego se llevó de nuevo a centrífuga. Los dos
sobrenadantes se mezclaron en los tubos de
vidrio y se agregaron 3mL de cloroformo analítico.
La mezcla se dejó en nevera durante 24 horas
para separar las fases (agua y cloroformo con los
lípidos). Una vez transcurridas las 24 horas se retiró
la capa de agua, los lípidos se traspasaron a cajas
de Petri previamente pesadas y llevadas a horno
a 38°C hasta evaporar el cloroformo; las cajas de
Petri con los lípidos se llevaron a desecador hasta
alcanzar peso constante.
Diseño experimental.
Se ejecutaron 3 etapas experimentales; Parámetros
de Diseño, Parámetros de Proceso y Parámetros
de Suministro. En los Parámetros de Diseño se
determinó la influencia de factores geométricos
del fotobiorreactor y del tamaño de burbuja
sobre la dilución de en el medio de cultivo.
En los Parámetros de Proceso se determinó la
influencia de la concentración de nutrientes (
y KNO3) sobre la producción de biomasa, lípidos
e hidrocarburos. En los Parámetros de Suministro
se determinó la influencia del tipo de suministro
de (inyección por pulsos o continua) sobre la
producción de biomasa, lípidos e hidrocarburos.
Para evaluar los efectos de los parámetros
variables seleccionados sobre las diferentes
variables de respuesta, se utilizó un diseño de
experimentos tipo factorial ampliado a DCC
(Diseño Central Compuesto).
Análisis estadístico
Se utilizó la metodología estadística del Análisis
de Varianza (ANOVA) para determinar la
influencia de los parámetros variables sobre las
variables de respuesta. Dentro del Análisis de
Varianza se utilizaron los diagramas de Pareto
como herramienta estadística. Se recurrió a la
metodología de la Superficie de Respuesta,
una herramienta estadística cuyo objetivo es
optimizar la variable de interés, determinando las
condiciones óptimas de operación del sistema. El
planteamiento del diseño experimental y el análisis
estadístico se desarrolló utilizando la herramienta
informática STATISTIC 7.0.
En la Tabla 1 se observan los resultados obtenidos en la etapa experimental de Parámetros de Diseño, incluyendo los experimentos originales y 2 réplicas. Los parámetros seleccionados con sus niveles fueron; altura (20, 30, 40cm), diámetro (6, 8, 10cm) y tipo de difusor (burbujeo, piedra difusora).
En la Tabla 2 se observan los resultados obtenidos en la etapa experimental de Parámetros de Proceso. Los parámetros seleccionados con sus niveles fueron; concentración de CO2 (0,02, 0,04 y 0,06v/vm) como fuente de carbono y concentración de KNO3 (0,38, 0,75, 1,5gKNO3 /L) como fuente de nitrógeno. En esta tapa experimental (Tabla 2) se realizó un suministro contínuo de CO2.
En la Tabla 3 se observan los resultados obtenidos en la etapa experimental de Parámetros de Suministro. Los parámetros seleccionados con sus niveles fueron idénticos a la etapa anterior (Parámetros de Proceso), pero se realizaron pulsos de inyección de CO2 de 20min con una etapa de asimilación (sin suministro) de 1 hora, para permitir buena solubilización en el medio y fijación por parte de los microorganismos.
Parámetros de diseño
A partir de los resultados experimentales, se
construyó la Tabla 4 de efectos estimados y las
Figuras 1 y 2 con los diagramas de Pareto y
las superficies de respuesta para determinar la
influencia de la altura, el diámetro y el difusor
sobre la dilución de CO2.
En la Figura 1-A se observa que usando burbujeo
como tipo de difusor, únicamente la altura (H)
fue significativa y tuvo un efecto positivo sobre
los resultados, es decir, a mayor altura mayor
dilución de CO2. Por otra parte, en la Figura 1-B
se observa que usando piedra difusora como tipo
de difusor, ambas variables, altura (H) y diámetro
(D), fueron significativas. En este caso, la altura
tuvo un mayor grado de significancia y un efecto
positivo, es decir, a mayor altura mayor dilución
de CO2. Por el contrario, el diámetro tuvo un
efecto negativo, es decir, a mayor diámetro menor
dilución de CO2.
En la Tabla 4 se observa en el caso de difusor burbujeo, que el efecto de la altura fue positivo, entonces la dilución de CO2 puede aumentar hasta en 163,11mg/L al pasar de un nivel bajo (20cm) a un nivel alto (40cm). Para el caso de la piedra difusora, el efecto de la altura también fue positivo, entonces la dilución de CO2 puede aumentar hasta en 194,3mg/L para los mismos niveles mencionados. Por el contrario, el efecto del diámetro fue negativo, entonces la dilución de CO2 puede disminuir hasta en 160,6mg/L al pasar de un nivel bajo (6cm) a un nivel alto (10cm) del diámetro.
La Figura 2-A muestra un valor máximo predicho de dilución (486,4mg CO2/L) que se obtiene con un valor crítico de altura de 38,5cm y un valor crítico de diámetro de 7,3cm. Por otra parte, la Figura 2-B muestra un valor máximo predicho de dilución (862,9mg CO2/L) que se obtiene con un valor crítico de altura de 36,9cm y un valor crítico de diámetro de 7,0cm. Se puede observar que el aumento de los valores máximos de dilución estuvo principalmente influenciado por cambios de altura y tamaño de partícula (difusor), mientras la influencia del diámetro del fotobiorreactor no fue tan significativa.
Parámetros de proceso y parámetros de
suministro
A partir de los resultados experimentales
obtenidos en cada etapa, se determinó la
influencia de los factores concentración de CO2
y de KNO3 sobre la producción de metabolitos,
y se contrastaron los resultados para ambos
métodos de suministro (Continuo y Pulsos).
Biomasa. En la Figura 3-A se observa que con suministro continuo la concentración de CO2 tuvo un efecto positivo sobre la producción de biomasa, es decir, a mayor concentración de CO2 mayor producción de biomasa. En la Figura 3-B se observa que con suministro por pulsos el efecto de la concentración de CO2 presentó el mayor grado de significancia sobre la producción de biomasa. Se observa además que los términos lineal y cuadrático para la concentración de CO2 tienen diferentes signos, esto quiere decir que el modelo presentó ensilladura. La concentración de nitrógeno influyó en menor grado con efecto negativo, es decir, que al pasar de niveles bajos a niveles altos de nitrógeno, la producción de biomasa tendió a disminuir y viceversa.
Según los resultados de los efectos estimados en la Tabla 5, para el suministro continuo el efecto de la concentración de CO2 fue positivo, entonces la producción de biomasa puede aumentar hasta en 1,11g/L al pasar de un nivel bajo (30mLCO2/min) a un nivel alto (90mLCO2/min) de suministro de CO2. Por otra parte, con el suministro por pulsos se observó que la concentración de CO2 tuvo efectos positivos y negativos sobre la producción de biomasa debido a un efecto ensilladura. Sin embargo, el efecto total de la variable concentración de CO2 fue positivo, es decir, la producción de biomasa tendió a aumentar conforme aumentó el valor de la variable. La concentración de nitrógeno tuvo un efecto negativo sobre la producción de biomasa, así al pasar de un nivel bajo (0,38g/L) a un nivel alto (1,5g/L) la producción puede disminuir hasta 0,17g/L.
En la Figura 4-A se puede observar que los valores máximos de producción de biomasa se obtuvieron con las concentraciones más elevadas de CO2, además, el aumento o disminución de los valores de producción estuvo principalmente influenciado por los cambios en la concentración de CO2, mientras los cambios debido a la concentración de nitrógeno no fueron evidentes. La Figura 4-B para suministro por pulsos, muestra un valor máximo predicho de producción de biomasa (0,912g/L) que se obtiene con un valor crítico de concentración de CO2 de 82,9mL/min y un valor crítico de concentración de nitrógeno de 0,57g/L. Se puede observar también que el principal parámetro que provocó una variación en la producción de biomasa fue la concentración de CO2, la cual a mayores niveles favoreció la productividad.
Lípidos. Para la producción de lípidos con suministro continuo, se observa en la Figura 5-A que todos los parámetros significativos; concentración de CO2, nitrógeno e interacción entre factores, tuvieron un efecto negativo sobre la producción de lípidos, es decir, a menor valor de los factores mayor producción de lípidos. En la Figura 5-B se observa que al igual que para la biomasa, el efecto de la concentración de CO2 presentó el mayor grado de significancia sobre la producción de lípidos, y el modelo también presentó ensilladura. La concentración de nitrógeno influyó aunque en menor grado que para el CO2. El signo positivo para los efectos del nitrógeno quiere decir que al pasar de niveles bajos a niveles altos de la variable, la producción de lípidos tiende a aumentar.
En la Tabla 6 se observa que para el suministro continuo el efecto de la concentración de CO2 fue negativo, entonces la producción puede disminuir en promedio 0,29g/g al pasar de un nivel bajo a un nivel alto de suministro de CO2. Asimismo, el efecto de la concentración de nitrógeno fue negativo, entonces la producción de lípidos puede disminuir hasta en 0,17g/g al pasar de un nivel bajo (0,38g/L) a un nivel alto (1,5g/L). Para el suministro por pulsos, en la Tabla 6 se observa que la concentración de CO2 también presentó efectos positivos y negativos debido a un efecto ensilladura, teniendo un efecto total negativo, es decir, la producción de lípidos tendió a aumentar conforme disminuyó la concentración de CO2. La concentración de nitrógeno tuvo un efecto positivo, es decir, a medida que aumentó su nivel, aumentó la producción de lípidos. Es así como al pasar de un nivel bajo (0,38g/L) a un nivel alto (1,5g/L) la producción puede crecer hasta en 0,10g lípidos/g biomasa.
La superficie de respuesta para la producción de lípidos con suministro continuo (Figura 6-A) muestra un valor máximo predicho (0,792g lípidos/g biomasa) que se obtiene con un valor crítico de concentración de CO2 de 58,17mL/min y un valor crítico de concentración de nitrógeno de 0,0g/L. Los cambios en los niveles de CO2 son los que generan contrastes más notorios en las productividades, notándose que el suministro de concentraciones medias de CO2 fue ideal para la producción de lípidos. Por otra parte, aunque a menores concentraciones de nitrógeno también se notó un pequeño aumento de la productividad, el efecto es mucho menor comparado con el CO2. La Figura 6-B con suministro por pulsos, muestra un valor mínimo predicho de producción de lípidos (0,184g lípidos/g biomasa) que se obtiene con un valor crítico de concentración de CO2 de 77,2mL/min y un valor crítico de concentración de nitrógeno de 0,80g/L. Se observa entonces que el principal parámetro de variación es la concentración de CO2, la cual a menores niveles favoreció la producción de lípidos. El efecto de la concentración de nitrógeno, aunque presentó un punto mínimo en un nivel medio y es menos significativo que el CO2, a medida que aumentó el nivel se favoreció la producción de lípidos.
Hidrocarburos. En el diagrama de Pareto con suministro continuo (Figura 7-A) se observa que el efecto de la interacción entre las variables presentó el mayor grado de significancia, es decir, la presencia de ambos parámetros influyó significativamente sobre la producción de hidrocarburos. El efecto de este factor fue positivo, entonces a mayor nivel de las variables, mayor producción. Además, el efecto de la concentración de CO2 también fue significativo, convirtiéndolo en un parámetro determinante en la producción de hidrocarburos. Por su parte en la Figura 7-B con suministro por pulsos la concentración de CO2 presentó el mayor grado de significancia con un modelo que exhibió ensilladura, y la concentración de nitrógeno tuvo un efecto positivo, es decir, al pasar de niveles bajos a niveles altos de la concentración de nitrógeno, la producción de hidrocarburos tendió a aumentar. En la Tabla 7 se observa que el efecto de la interacción entre variables es positivo sobre la producción de hidrocarburos para suministro continuo, aumentando hasta en 13126,3μg/g al aumentar los niveles en ambos factores, principalmente la concentración de CO2 , la cual tuvo efectos positivos y negativos debido a un efecto ensilladura. Por su parte para el suministro por pulsos se aprecia que la concentración de CO2 tuvo efectos positivos y negativos sobre la producción de hidrocarburos debido a un efecto ensilladura. Sin embargo, el efecto total de la variable concentración de CO2 fue positivo, es decir, la producción tiende aumentar conforme aumenta el valor de la variable. La concentración de nitrógeno tuvo un efecto positivo, es decir, a medida que aumenta su nivel, aumenta la producción de hidrocarburos. Es así como al pasar de un nivel bajo (0,38g/L) a un nivel alto (1,5g/L) la producción puede crecer hasta en 4289,26μg/g.
En la Figura 8-A se observa que la producción de hidrocarburos aumentó con el aumento de la concentración de CO2 , pero también aumentó a medida que disminuye la concentración de CO2 , esta condición se da por un punto de ensilladura que une los máximos de la función. Es evidente que los máximos valores de producción de hidrocarburos se consiguieron con altas concentraciones de CO2 y de nitrógeno, o bajas concentraciones de ambos nutrientes, ratificando la importancia de la interacción y el suministro de ambas variables sobre la productividad. En la superficie de respuesta con suministro por pulsos (Figura 8-B) se evidencia un mínimo predicho de producción de hidrocarburos para valores medios de los parámetros (CO2 ; 64,6mL/min y nitrógeno; 0,58g/L). Estos resultados muestran que tanto la concentración de CO2 como la concentración de nitrógeno influyen casi con la misma significancia sobre la respuesta. Respecto al CO2 , altos y bajos niveles favorecieron a una alta producción de hidrocarburos. Por su parte respecto al nitrógeno, aunque presentó un punto mínimo en un nivel medio, a medida que aumenta el nivel del factor se favorece la producción de hidrocarburos.
Resultados de productividad En las Tablas 8 y 9 se observa la producción de los metabolitos de interés (biomasa, lípidos e hidrocarburos) para los días 5, 10 y 15 de la experimentación. La biomasa presentó su producción más alta con suministro continuo de CO2 (Tabla 8) con valores de hasta 1,78g/L. Las corridas 3, 4 y 7 con las concentraciones más altas de CO2 (90, 90 y 102mL/min, respectivamente) presentaron las más altas productividades para los días 10 y 15. La concentración de nitrógeno no fue relevante sobre altas producciones de biomasa, ya que los valores más altos se consiguieron tanto con concentraciones altas como bajas del nutriente. Las productividades más altas de lípidos durante los 10 primeros días se lograron con suministro por pulsos de concentraciones altas de CO2 (> 90mL/min) y concentraciones medias a bajas de nitrógeno (< 0,75g/L) como se ve en las corridas 3 y 7 (Tabla 9). Después del día 10 se observó que el suministro continuo de concentraciones medias de CO2 (50-60mL/min) y bajas a nulas de nitrógeno, como ocurren en las corridas 5, 8 y 10 (Tabla 8) fueron ideales para altas producciones de lípidos.
La producción de hidrocarburos presentó máximos de producción para el día 15 en las corridas 1 y 2 (Tabla 8), para niveles altos y bajos de nitrógeno, siendo máximo el valor suministrando de manera continua. Con suministro continuo hubo un comportamiento similar a través del tiempo; para el día 10 la productividad de todos los ensayos venía en caída. Por el contrario, el suministro por pulsos arrojó aumentos en la productividad hasta el día 10 para las corridas 2, 3 y 6, todas con suministro bajo de CO2.
En estudios previos, Eriksen, Poulsen y Iversen
[30] inyectaron CO2 puro a medios de cultivo
de microalgas utilizando difusores de membrana
y difusores de orificios, y observaron que la
proporción del CO2 agregado que se disuelve
en el cultivo aumenta del 11% al 55% al usar
membrana en vez de orificios, concluyendo que
el pequeño tamaño de la burbuja del difusor de
membrana (< 1mm) aumenta el coeficiente de
transferencia de masa de CO2. En el presente
estudio se respaldan dichos resultados, ya que
se encontraron aumentos del 18% al 45,9% en
la proporción de CO2 disuelto al usar una piedra
difusora sobre un difusor de burbujeo, lo cual
puede atribuirse a la influencia opuesta del tamaño
de burbuja en el coeficiente de transferencia de
masa KL y el área interfacial específica AL [34]. Más
aun, se obtuvieron diluciones de CO2 de hasta
57,5% usando geometrías del fotobiorreactor con
diámetro de 8cm y altura de 45cm. Con base en
los resultados obtenidos, se puede afirmar que
dentro de los parámetros de diseño referentes a
la geometría del reactor, la altura es influyente sin
importar el tipo de difusor. Esto se debe a que esta
variable aumenta el tiempo de residencia del gas
en el medio acuoso, contribuyendo explícitamente
a la dilución. Estudios previos [5] han demostrado
que el aumento de la altura de la columna de agua
por encima de 30cm reduciría la pérdida de CO2,
es más, se hallaron transferencias de CO2 de
hasta el 100% cuando la altura de la columna era
mayor a 50cm. Se puede resaltar entonces que se
encontraron condiciones óptimas para lograr una
alta dilución de CO2 en el medio de cultivo con
tamaños de burbuja pequeños (piedra difusora),
alturas de columna de líquido importantes (>30cm)
que aumenten el tiempo de residencia del gas y
diámetros medios (≤8cm) que aporten a una baja
dispersión de las burbujas en el reactor para
aumentar la transferencia.
El crecimiento lento de B. braunii ha sido el paso
limitante para su explotación exitosa como fuente
de hidrocarburos [35]. Ranga Rao [27] encontraron
que las cepas de B. braunii mostraron incrementos
en la producción de biomasa usando atmósferas
enriquecidas con CO2 en comparación con el cultivo
de control sin CO2, lo que muestra la eficiencia
metabólica a través del crecimiento foto autotrófico.
Por su parte, Wolf, Nanomura y Bassham [36]
hallaron que cultivos de B. braunii alimentados
con aire enriquecido con 0,3% de CO2, tienen un
tiempo de duplicación de masa mucho más corto
(40 horas) en comparación con 6 días para los
cultivos suministrados con aire del ambiente. En
cuanto al efecto del nitrógeno, Ruangsomboon [37]
encontró que la biomasa de la cepa KMITL 2 de B.
braunii no fue significativamente afectada por la
concentración de nitrógeno después de 30 días de
cultivo. El presente estudio respalda y valida estas
observaciones mediante un diseño experimental
donde se encontró que el tipo de suministro y la
concentración de CO2 tienen una alta significancia
estadística sobre la producción de biomasa de B.
braunii, mientras la concentración de nitrógeno
no presenta influencia importante. Esto se puede
deber al elevado contenido de carbono (hasta
50%p) que se tiene registrado de esta especie de
microalga [38], convirtiendo al CO2 en una fuente
de carbono esencial para el crecimiento del cultivo.
Se encontraron las mejores productividades de
biomasa suministrando CO2 de manera continua
al cultivo. Los tratamientos a los cuales se les
suministró la concentración más alta de CO2 de
0,06v/vm (90mLCO2/min) exhibieron la producción
más alta de biomasa de 1,78g/L para el día 15,
y productividades de hasta 0,186g/L.día. En
estudios previos, Ge, Liu y Tian [28] obtuvieron
resultados similares en cultivos de B. braunii
encontrando producciones máximas de biomasa
de 2,31g/L para el día 25 de cultivo y de 1,18g/L
para el día 15, usando la concentración máxima
de CO2 estudiada de 0,04v/vm. Por el contrario,
Yoshimura, Okada y Honda [39] encontraron las
mejores productividades usando concentraciones
de hasta 0,015v/vm; a concentraciones superiores
las tasas de crecimiento comenzaron a decrecer.
Estos resultados permiten afirmar que la
concentración óptima de CO2 para el crecimiento
es específica para cada cepa. En el presente
estudio, el aumento de la concentración de CO2
que se suministra al cultivo de la cepa colombiana
tiene como resultado un aumento significativo en
la producción final de biomasa. Más aun, con el
tipo de suministro de CO2 y las concentraciones
máximas planteadas en el presente estudio se
encontró un aumento en la producción de biomasa
del 33,7% respecto a lo reportado por Ge et
al. [28] obteniendo más altas producciones en
tiempos más cortos. Se puede reportar entonces
que las mejores condiciones para lograr una alta
producción de biomasa en cultivos de B. braunii
son altas concentraciones de CO2 > 0,06v/vm
suministrado de manera continua, que pongan a
disposición una fuente de carbono suficiente para
el crecimiento del cultivo, teniendo en cuenta que
la cepa estudiada presentó buena tolerancia a
altas concentraciones de CO2.
Para la producción de lípidos, se encontró que tanto
la concentración de CO2 como la concentración de
nitrógeno suministradas al cultivo tienen un efecto
sobre la producción, siendo el CO2 el factor más
significativo estadísticamente. Estudios previos
han reportado que aunque una deficiencia de
nitrógeno favorece la acumulación de lípidos al
limitar la síntesis de proteínas [40,41], se requiere
nitrógeno para el crecimiento. Más aun, Ge et al.
[28] concluyeron que el contenido relativamente
bajo de lípidos en sus cultivos de B. braunii se
puede deber a las altas concentraciones de
nitrógeno utilizadas comparado con otros trabajos.
En el presente estudio se encontraron las mejores
producciones de lípidos usando concentraciones
bajas a nulas de KNO3, con contenidos de hasta el
84%p (0,84g de lípidos / gramos de biomasa) para
suministros nulos de nitrógeno, lo cual respalda
los comportamientos previos encontrados en otras
investigaciones. Se ha reportado que el contenido
total de lípidos de B. braunii varía en un rango
de 26% a 86% del peso seco [42]. Yoo et al. [43]
compararon la producción de lípidos en 3 especies
de microalgas (Botryococcus braunii, Chlorella
vulgaris y Scenedesmus sp.) encontrando que
el contenido total de lípidos de B. braunii era
2-4 veces mayor que el de las otras dos cepas,
alcanzando un contenido máximo de lípidos
totales de 25,79%p usando una concentración de
CO2 de 0,03v/vm. Por su parte, Ranga Rao et al.
[27] expusieron que el contenido total de lípidos
de la cepa de B. braunii cultivada en diferentes
niveles de CO2 estaba en el intervalo de 28-30%p,
mientras que en el control sin suministro de CO2
fue 22%p. Ge et al. [28] reportaron contenidos
de lípidos de 10,41, 11,21, 12,44 y 12,71%p con
0,005, 0,01, 0,02 y 0,04v/vm de aireación CO2,
respectivamente.
En el presente estudio se encontraron
productividades máximas de lípidos para el día
10 de 0,106glípidos/gbiomasa.día, logrando
producciones de hasta 76%p, esto usando
concentraciones altas de CO2 (≥0,06v/vm) y
suministrándolo de manera discontinua (por
pulsos). Para el día 15, la productividad máxima
de lípidos fue de 0,098g/g.día y la producción más
alta fue de 84%p, esto usando concentraciones
medias de CO2 (0,04v/vm) y suministrándolo de
manera continua al cultivo. Estos resultados son
bastante prometedores ya que se planteó una
metodología de suministro de CO2 con la cual se
obtuvieron producciones mucho más altas que las
registradas en la literatura. Teniendo en cuenta que
el biodiésel consiste en gran parte de los ésteres
metílicos de ácidos grasos, que son producidos
por la transesterificación de los lípidos de origen
biológico [44], la cepa estudiada a las condiciones
de suministro de CO2 encontradas se perfila como
una fuente prometedora de materia prima para la
producción de biodiésel.
En cuanto a la producción de hidrocarburos,
se encontró que la concentración de CO2 y su
método de suministro influyen significativamente
sobre la productividad. La presencia de nitrógeno
también tiene significancia estadística sobre la
producción, pero el CO2 es el factor principal que
determina este efecto. Estudios previos avalan
estos resultados; Casadevall et al. [24] reportaron
que una concentración inicial de NO3
- > 0,2mg/L favorece la producción de hidrocarburos. Por su
parte, Metzger et al. [26] reportaron incrementos
en el contenido de hidrocarburos desde el 5%
para cultivos sin aire, hasta el 61% para cultivos
con suministro de aire mezclado con CO2 al 1%,
dependiendo del origen de la cepa. Moheimani et
al. [45] estudiaron la recuperación de hidrocarburos
en cultivos de B.braunii después de una primera
extracción, encontrando tiempos de 11 días para
cultivos sin suministro de CO2 y de 4 días para
cultivos con suministro de 0,02v/vm. En el presente
estudio se encontraron las productividades más
altas de hidrocarburos usando las concentraciones
más bajas de CO2. Producciones máximas de
46531,1μg/g (4,6%p) para el día 15 de cultivo se
obtuvieron usando la concentración más baja
de CO2 estudiada (0,02v/vm) con un suministro
continuo. Para el día 10, se encontraron las
máximas productividades (1108,14μg/g.día)
usando concentraciones bajas de CO2 con un
suministro discontinuo (pulsos). Estos resultados
contrastan con datos obtenidos anteriormente.
Por ejemplo Wolf et al. [36] reportaron que su
cepa de B. braunii acumuló entre el 24-29%
de la biomasa seca en forma de hidrocarburos
botriococenos. Okada, Murakami, y Yamaguchi
[46] por su parte estimaron para su cepa de B.
braunii producciones de hidrocarburos en el
rango de 10-38% del peso de la biomasa seca.
Además, diversos estudios [22,27,28] informaron
que el contenido de hidrocarburos de B. braunii
aumentó con el aumento de la concentración de
CO2. Estas diferencias en el contenido y perfil de
hidrocarburos entre lo encontrado en el presente
estudio y lo reportado en la literatura, podrían
atribuirse a las diferencias entre las razas de las
cepas estudiadas, ya que dependiendo de las
características biológicas de la especie producen
hidrocarburos por diferentes vías metabólicas [27],
concluyendo así que aunque la especie B. bruanii
se caracteriza por metabolizar hidrocarburos
naturales, la cepa estudiada no posee una buena
capacidad de síntesis de hidrocarburos.
Con base en los análisis anteriores se valida la
importancia y aporte del estudio realizado, ya que
se plantearon metodologías de suministro de CO2
a cultivos de B.braunii con las que se obtuvieron
producciones de biomasa similares a lo reportado
en la literatura, pero en tiempos más cortos de
suministro y cultivo, además se evidenciaron
producciones de lípidos hasta 3 veces mayores a
lo reportado en estudios previos, lo cual, además
de resaltar la validez y eficiencia de los métodos
planteados, resalta el potencial de la cepa
colombiana de B. braunii estudiada como potencial
fuente de lípidos para la producción de biodiésel.
La altura de la columna del líquido y del tipo de difusor influyen significativamente sobre la dilución de CO2 en un medio de cultivo específico para B. braunii, logrando mayores diluciones con alturas >35cm y pequeños tamaños de burbuja. Quedó demostrado que el aumento en la concentración de CO2 tiene un efecto positivo sobre la producción de biomasa en el cultivo de B. braunii, registrando las mayores productividades con las mayores concentraciones suministradas. Se encontró además que la producción de lípidos en cultivos de B. braunii aumenta hasta 7 veces respecto a los ensayos sin suministro, usando concentraciones de CO2 entre 0,04 - 0,06v/vm y bajas o nulas de nitrógeno, combinando además regímenes de suministro continuo y por pulsos. Esto demuestra la importancia que tiene la fuente de carbono (CO2) en la síntesis de lípidos para la cepa estudiada. También se evidenció que la producción de hidrocarburos en cultivos de B. braunii se ve favorecida con concentraciones de CO2 de 0,02v/vm, aunque las productividades finales fueron muy bajas comparadas con estudios previos. Quedó comprobado que la variación en el método de suministro (Pulsos y Continuo) afecta directamente la magnitud y el efecto que tiene el CO2 sobre la producción de biomasa, lípidos e hidrocarburos en cultivos de B. braunii. Así entonces se validó el potencial de la cepa de B. braunii colombiana para la producción de biodiésel gracias a sus altas tasas de síntesis de lípidos.
[1] Garcia Alba L, Torri C, Samori C, Brilman DW. Hydrothermal Treatment (HTT) of Microalgae: Evaluation of the Process As Conversion Method in an Algae Biorefinery Concept. Energ. Fuels. 2012;26(1):642-57.
[2] Energy Information Administration. Annual Energy Review. United States: Department of Energy; 2008.
[3] Wang B, Li Y, Wu N, Lan CQ. CO2 bio-mitigation using microalgae. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2008;79(5):707-18.
[4] Li Y, Wang B, Wu N, Lan C. Effects of nitrogen sources on cell growth and lipid production of Neochloris oleoabundans. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2008;8:629-36.
[5] Csogör Z, Herrenbauer M, Schmidt K, Posten C. Light distribution in a novel photobioreactor - modeling for optimization. J. Appl. Phycol. 2001;13:325-33.
[6] Lee C. Calculation of Light Penetration Depth in Photobioreactors. Biotechnol. Bioprocess Eng.1999;4(1):78-81.
[7] Kondili E, Kaldellis J. Biofuel implementation in East Europe: current status and future prospects. Renew. Sust. Energ. 2007;11:2137- 51.
[8] De Morais MG, Vieira Costa J. Biofixation of carbon dioxide by Spirulina sp. and Scenedesmus obliquus cultivated in a three stage serial tubular photobioreactor. J. Biotechnol. 2007;129:439-45.
[9] Costa R, Medri W, Perdomo C. High-rate pond for treatment of piggery wastes. Water Sci. Technol. 2000;42(10):357-62.
[10] Bilanovic D, Andargatchew A, Kroeger T, Shelef G. Freshwater and marine microalgae sequestering of CO2 at different C and N concentrations - Response surface methodology analysis. Energ. Convers. Manage. 2009;50(2):262-7.
[11] Falkowski PG, Raven JA. Aquatic photosynthesis. London: Princeton University Press; 1997.
[12] Chisti Y. Biodiesel from microalgae. Biotechnol. Adv. 2007;25(3):294-306.
[13] Beneman J, Hughes E. Biological fossil CO2 mitigation. Energ. Convers. Manage. 1997;38(19):467-73.
[14] Tapie P, Bernard A. Microalgae production technical and economic evaluations. Biotechnol Bioeng. 1988;32(7):873-85.
[15] Abalde A, Cid A, Fidalgo P, Torres E, Herrero C. Microalgas: Cultivos y Aplicaciones. Universidad Da Coruña; 1995. Monografía No.26, p. 210.
[16] Mallick N. Biotechnological potential of immobilized algae for wastewater N, P and metal removal: A review. BioMetals. 2002;15(4):377-90.
[17] Cheng L, Zhang L, Chen H. Carbon dioxide removal from air by microalgae cultured in a membrane-photobioreactor. Sep. Purif. Technol. 2006;50(3):324-9.
[18] Richmond A. Handbook of microalgal culture: biotechnology and applied phycology. United States: Blackwell Science Ltd; 2004.
[19] Li Y, Horsman M, Wu N, Lan C, Dubois-Calero N. Biofuels from microalgae. Biotechnol. Progr. 2008;24(4):815-20.
[20] Raja R, Hemaiswarya S, Kumar N, Sridhar S, Rengasamy R. A perspective on the biotechnological potential of microalgae. Crit. Rev. Microbiol. 2008;34(2):77-88.
[21] Weiss TL, Johnston JS, Fujisawa K, Okada S, Devarenne TP. Genome size and phylogenetic analysis of the A and L races of Botryococcus braunii. J. Appl. Phycol. 2010;23(5):833-9.
[22] Banerjee A, Sharma R, Chisti Y, Banerjee U. Botryococcus braunii: A Renewable Source of Hydrocarbons and Other Chemicals. Crit. Rev. Biotechnol. 2002;22(3):245-79.
[23] Wake L, Hillen L. Study of a 'bloom' of the oil-rich alga Botryococcus braunii in the Darwin River Reservoir. Biotechnol. Bioeng. 1980;22(8):1637-56.
[24] Casadevall E, Dif D, Largeau C, Gudin C, Chaumont D, Desanti O. Studies on batch and continuous cultures of Botryococcus braunii: hydrocarbon production in relation to physiological state, cell ultrastructure, and phosphate nutrition. . Biotechnol. Bioeng. 1985;27(3):286-95.
[25] Largeau C, Casadevall E, Berkaloff C, Dhamliencourt P. Sites of accumulation and composition of hydrocarbons in Botryococcus braunii. Phytochem. 1980;19:1043-51.
[26] Metzger P, Largeau C. Botryococcus braunii: a rich source for hydrocarbons and related ether lipids. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2005;66:486-96.
[27] Ranga Rao A, Sarada R, Ravishankar G. Influence of CO2 on Growth and Hydrocarbon Production in Botryococcus braunii. J. Microbiol. Biotechnol. 2007;17(3):414-9.
[28] Ge Y, Liu J, Tian G. Growth characteristics of Botryococcus braunii under high CO2 concentration in photobioreactor. Bioresource Technol. 2011;102(1):130-4.
[29] Ono E, Cuello J. Design parameters of solar concentrating systems for CO2 mitigating algal photobioreactors. Energ. Conver. Manage. 2004;29:1651-7.
[30] Eriksen N, Poulsen B, Lonsmann J. Dual sparging laboratory-scale photobioreactor for continuous production of microalgae. J. Appl. Phycol. 1998;10(4):377-82.
[31] Khan S, Hussain M, Prasad S, Banerjee U. Prospects of biodiesel production from microalgae in India. Renew. Sust. Energ. Rev. 2009;13(9):2361-72.
[32] Eroglu E, Melis A. Extracellular terpenoid hydrocarbon extraction and quantitation from the green microalgae Botryococcus braunii var. Showa. Bioresource Technol. 2010;101:2359- 66.
[33] Bligh E, Dyer W. A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochem. and Physiol. 1959;37(8):911-7.
[34] Contreras A, García F, Molina E, Merchuk J.C. Interaction Between CO2-Mass Transfer, Light Availability, and Hydrodynamic Stress in the Growth of Phaeodactylum tricornutum in a Concentric Tube Airlift Photobioreactor. Biotechnol. Bioeng. 1998;60(3):317-25.
[35] Iwamoto H. Production of hydrocarbons by microalgae. Bio. Sci. Ind. 1986:44;1160-7.
[36] Wolf F, Nanomura A, Bassham J. Growth and branched hydrocarbon production in a strain of Botryococcus braunii. J. Phycol. 1985;21(3):388-96.
[37] Ruangsomboon, S. Effect of light, nutrient, cultivation time and salinity on lipid production of newly isolated strain of the green microalga, Botryococcus braunii KMITL 2. Bioresour. Technol. 2012;109:261-5.
[38] Mazzuca T, Garcia F, Camacho F, Acien F, Molina E. Carbon Dioxide Uptake Efficiency by Outdoor Microalgal Cultures in Tubular Airlift Photobioreactors. Biotechnol. Bioeng. 2000;67(4):465-75.
[39] Yoshimura T, Okada S, Honda M. Culture of the hydrocarbon producing microalga Botryococcus braunii strain Showa: Optimal CO2, salinity, temperature, and irradiance conditions. Bioresour. Technol. 2013;9:133:232-9.
[40] Ben-Amotz A, Torbene T. G, Thomas W. H. Chemical profile of selected species of microalgae with emphasis on lipids. J. Phycol. 1985;21(1):72-81.
[41] Converti A, Casazza A.A, Ortiz E.Y, Perego P, Del Borghi M. Effect of temperature and nitrogen concentration on the growth and lipid content of Nannochloropsis oculata and Chlorella vulgaris for biodiesel production. Chem. Eng. Process. 2009;48:1146-51.
[42] Dayananda C, Sarada R, Usha Rani M, Shamala T.R, Ravishankar G.A. Autotrophic cultivation of Botryococcus braunii for the production of hydrocarbons and exopolysaccharide in various media. Biomass Bioenerg. 2007;31(1):87-93.
[43] Yoo C, Jun S, Lee J, Ahh C, Oh H. Selection of microalgae for lipid production under high levels carbon dioxide. Bioresource Technol. 2010;101(1):71-4.
[44] Wackett L.P. Biomass to fuels via microbial transformations. Curr. Opin. Chem. Biol. 2008:12(2):187-93.
[45] Moheimani NR, Matsuura H, Watanabe MM, Borowitzka MA. Non-destructive hydrocarbon extraction from Botryococcus braunii BOT-22 (race B). J. Appl. Phycol. 2014;26:1453-63.
[46] Okada S, Murakami M, Yamaguchi K. Hydrocarbon composition of newly isolated strains of green microalga Botryococcus braunii. J. Appl. Phycol. 1995;7(6):555-9.