DOI: http://dx.doi.org/10.18273/revion.v29n1-2016002
Diana Margarita Hernández Avilés; Dayana Katerine Grisales Penagos;
Adela Tatiana Rodríguez Chaparro*
Programa de Ingeniería Civil. Universidad Militar Nueva Granada (UMNG), Cra 11 N° 101-80, Bogotá-Colombia
*adela.rodriguez@unimilitar.edu.co
Fecha Recepción: 22 de noviembre de 2015
Fecha Aceptación: 6 de enero de 2016
El objetivo de este estudio es comparar la producción de hidrógeno en un reactor de biomasa fija y de manto de lodos y flujo ascendente (Hybrid UASB). Se utilizó neumático triturado y anillos de Biopack como material de soporte. Los reactores fueron operados por 35 días con un tiempo de detención hidráulica de 12h y una carga orgánica volumétrica de 11,26gDQO/L.d, usando sacarosa como fuente de carbono. La producción porcentual promedio de hidrógeno fue de 45 y 48% para el reactor de biomasa fija y el reactor UASB-Híbrido, respectivamente. Con base en los resultados y análisis estadístico, se determinó que la configuración del reactor no influye en la producción de H2. Adicional a lo anterior, se observó estabilidad en el proceso.
Palabras clave: ácidos volátiles totales, conversión de la sacarosa, energía renovable, fermentación natural.
The aim of this study is to compare the hydrogen production on a packed-bed reactor and upflow anaerobic sludge blanket (Hybrid UASB). Crumb rubber (recycled tires) and Biopack rings were used as a support matrix. The reactors were operated for 35 days with hydraulic retention time of 12h and an organic volumetric load of 11.26gCOD/L.d, using sucrose as carbon source. The average hydrogen production was 45 and 48% for packed-bed reactor and Hybrid-UASB, respectively. Based on the results and the statically analysis, it was determined that the configuration of the reactor does not influence on the hydrogen production. Moreover, it was observed stability of the process.
Keywords: volatile fatty acids, natural fermentation, renewable energy, sucrose conversion.
O propósito desse estudo foi comparar a produção de hidrogênio num reator de biomassa fixa e no reator de manto de lodos e fluxo ascendente (UASB-Hibrido). Foram utilizados como material de suporte pneu reciclado e anels de Biopack. Os reatores foram operados durante 35 dias com um tempo de detenção hidráulica de 12h e uma carga orgânica volumétrica de 11,26gCOD/L.d, com sacarose como fonte de carbono. O porcentual media produção de hidrogênio foi de 45 e 48% para o reator de biomassa fixa e o reator UASB-Hibrido, respectivamente. Com base nos resultados e a analise estadística, foi observado que a configuração do reator não influencia na produção do hidrogênio. Além disso, se encontrou que o processo foi estável.
Palabras-chave: ácidos voláteis totais, conversão de sacarose, energia renovável, fermentação natural.
Cita: Hernández Avilés DM, Grisales Penagos DK, Rodríguez Chaparro AT. Efecto de la configuración de reactores anaerobios de alta tasa en la producción de hidrógeno: biomasa fija y UASB-híbrido. rev.ion. 2016;29(1):27-36.
En las últimas décadas, la investigación sobre
alternativas de fuentes de energías limpias y
renovables se ha convertido en una prioridad para
la política y la ciencia, debido a que diferentes
estudios han indicado el aumento de la demanda
energética y así mismo su futuro agotamiento.
Algunas proyecciones realizadas por la Agencia
Internacional de Energía (IEA), muestran un
aumento en el consumo de energía del 60% para el
año 2030, cifra que genera una gran preocupación
en la actual economía mundial por ser fuertemente
dependiente del combustible fósil. De otro lado,
su uso para producir energía plantea varios
problemas ambientales como contaminación y
producción de gases de efecto invernadero [1].
Las plantas de tratamiento de aguas residuales
(PTAR) son infraestructuras capaces de generar
energía renovable que puede ser usada para
fines propios [2]. Es usual que en las PTAR se
utilicen aguas residuales domésticas o de una
industria específica para mejorar las tasas de
producción y rendimientos del biogás [3], el cual
está compuesto comúnmente por metano (50-
70%) y dióxido de carbono (30-50%), entre otros
gases [4] como hidrógeno y nitrógeno. El metano
y el dióxido de carbono son fuentes de energía
renovable aceptables, pero también son gases
de efecto invernadero que pueden contribuir a la
contaminación del medio ambiente [5]. Por esta
razón, la producción de hidrógeno a partir de la
aplicación de procesos biológicos anaerobios en
aguas residuales es reconocida como una mejor
opción para generar energía.
El gas de hidrógeno (H2) representa una
alternativa prometedora a los combustibles fósiles,
es una fuente ambientalmente segura y renovable
que ha empezado a ser considerada como ''el
combustible del futuro'' porque produce agua
durante su combustión y no carbono cuando se
utiliza como combustible [6]. El hidrógeno es una
eficiente fuente de energía (122kJ/g), con 2,75
veces más energía contenida que cualquier otro
hidrocarburo, puede ser convertido en energía
eléctrica y/o mecánica y térmica [7].
Según Das D et al. [8], el hidrógeno se puede
extraer de los combustibles fósiles, el agua y la
materia biológica. En el último caso, los compuestos
orgánicos son fermentados por bacterias que
liberan H2 por medio de hidrogenasas y la
eliminación de los electrones generados durante la
degradación de los carbohidratos. Estas bacterias
pueden producir H2 a un alto nivel, día y noche y
sin luz. Además, al crecer y multiplicarse pueden
proporcionar al sistema de producción con nuevos
microorganismos rápidamente. Comparado con
otros procesos, la fermentación oscura es uno
de los procesos más atractivos [9] por usar la
capacidad de los anaerobios estrictos o facultativos,
tales como Clostridium, Enterobacter y Bacillus
para producir H2 y ácidos grasos volátiles (ácido
acético, ácido butírico, ácido propiónico, etc.) a
partir de materias primas orgánicas complejas [1].
Como se reporta en la literatura, los carbohidratos
son el sustrato más eficaz para la producción de
H2 por fermentación oscura [10]. Por lo tanto, los
residuos y las aguas residuales ricos en sacarosa
y carbohidratos, como los son residuos de
alimentos de fabricación, suero de queso, aguas
residuales de fábricas de azúcar, aguas residuales
de bodegas de arroz, etc., son las materias primas
adecuadas para la producción de H2 [11].
Dos tipos principales de reactores se emplean
comúnmente para experimentos continuos y
semi continuos [12]: (i) reactores de biomasa
suspendida, en el que las bacterias fermentativas
forman flocks de biomasa que se mezclan
continuamente con las aguas residuales, y (ii)
reactores de biopelícula, donde las bacterias
fermentativas crecen en la superficie del material
de soporte, formando un biofilm. [1]. Se considera
que los reactores anaerobios de alta tasa como,
los reactores de biomasa fija y los reactores tipo
UASB son sistemas económicamente viables
que han reportado notoriamente producciones de
hidrógeno [13], utilizando tiempos de detención
hidráulica (TDH) entre 2-24h para los UASB [14]
y TDH entre 4-24h para los PBR [15] con cargas
orgánicas entre 6,5-51,4gDQO/Ld [16].
De acuerdo a las condiciones de operación, se
ha observado que los reactores UASB pueden
presentar mayores tasas de producción de
hidrógeno que los reactores de biomasa fija,
utilizando como fuente de carbono la glucosa,
debido a que la inoculación en la fase líquida de un
reactor UASB es más rápida que la inoculación en
la fase sólida de un reactor de biomasa fija [17]. Así
mismo, se demostró que el reactor UASB tiene un
mejor rendimiento en la producción de hidrógeno
por su capacidad de transferencia de masa entre
las comunidades microbianas y el sustrato [18,19].
El objetivo de este estudio es comparar la
producción de hidrógeno a partir de dos
configuraciones diferentes de reactores biológicos,
reactor de lecho fijo (PBR) y reactor de biomasa
en suspensión (UASB) utilizando como medios de
soporte neumático triturado y anillos de Biopacks
respectivamente. Aplicando una carga orgánica
volumétrica de 11,26gDQO/m3d y fuente de
carbono sacarosa con un TDH de 12h.
Reactores Anaerobios
Se utilizaron dos tipos de reactores anaerobios de
alta tasa y flujo ascendente, a saber: un Reactor de
biomasa fija (R1) y un Reactor tipo UASB-Híbrido (R2).
Los dos reactores se construyeron con geometría
cilíndrica y material de acrílico transparente
(polimetilmetacrilato, PMMA). Las dimensiones
fueron las siguientes: para el reactor R1 la altura,
el diámetro interno y el volumen fueron de 675mm,
74mm y 1,8L, respectivamente; para el reactor R2
la altura, el diámetro interno y el volumen fueron
de 700mm, 74mm y 3L. En la parte superior se
colocó una campana y un deflector de 60mm y
70mm de diámetro, respectivamente para hacer
una separación adecuada de los gases y sólidos.
La Figura 1 muestra una fotografía del montaje y el
material de soporte utilizado en cada uno.
Materiales de soporte
En el reactor R1 se utilizó como medio de soporte
neumático triturado reciclado. El Neumático se
caracterizó por medio de un análisis granulométrico
[20], que resultó en valores del diámetro entre
2,36-4,75mm y un coeficiente de uniformidad
de 1,48. La altura del lecho y la porosidad fue
580mm y 62%, respectivamente. En el caso del
reactor R2, se utilizaron anillos de Biopack, dentro
de los cuales se colocó un núcleo de espuma de
poliuretano; esta modificación se realizó con la
finalidad de mejorar la adherencia de la biomasa
en los reactores UASB, de acuerdo con estudios
previos realizados por el Grupo de Tratamiento
de Agua en este mismo tipo de sistemas. Los
Biopack son anillos tipo Biomax PFC-1, fabricados
con polietileno de alta densidad que presentan
un área superficial específica de 950m2/m3. Para
conformar una altura de lecho de suspensión de
100mm se utilizaron 94 unidades de anillos.
Agua sintética
Se preparó un agua residual utilizando
sacarosa como fuente de carbono siguiendo las
recomendaciones de Carminato VM [21], a la cual
se le adicionó una concentración de 5630mg/L para
mantener el valor de la carga orgánica volumétrica
de 11,26gDQO/m3d. Este valor de carga se
tomó a partir de estudios previos realizados por
el Grupo de Investigación en Tratamiento de
Agua para reactores de lecho fijo utilizando el
neumático triturado como material de soporte
[22]. También, se adicionaron micronutrientes
con una concentración de 36,38mgCH4N2O/L,
1,58mgNiSO46H2O/L, 7,90mg FeSO47H2O/L,
0,79mg FeCl36H2O/L, 6,51mgCaCl22H2O/L, 0,13mg
CoCl22H2O/L, 0,11mgSeO2 /L, 16,94mgKH2PO4 /L,
4,11mgK2HPO4 /L y 8,72mgNa2HPO42H2O/L.
Inoculación y operación
El reactor R1 se inoculó utilizando la fermentación
natural. Este proceso consiste en permitir que
el agua sintética inicie contacto con el aire y la
temperatura ambiente durante 3 días previos a la
operación [23]. Después, el agua fermentada se
recircula en su totalidad a través del reactor R1
durante 7 días. Para el reactor R2 (UASB-Híbrido),
se utilizó el agua previamente fermentada y
recirculada procedente del reactor R1, esto con el
fin de incrementar la adherencia de la biomasa
en el reactor UASB-Híbrido, según estudios
previos realizados por el Grupo de investigación
en Tratamiento de Agua.
Los reactores R1 y R2 fueron operados en régimen
continuo con temperatura controlada de 35 ±1°C.
El pH inicial del agua residual sintética se ajustó
a 5,48 ±0,34 por adición de Ácido clorhídrico 10N
(HCL) y Bicarbonato de sodio (500mgNaHCO3/L),
lo anterior con el fin de facilitar un ambiente ácido
para inhibir la actividad metanogénica [24,25,26].
Los reactores fueron operados durante 35 días con
una carga orgánica volumétrica de 11,26gDQO/m3d
y un tiempo de detención hidráulica (TDH) de 12h
que se controló mediante una bomba peristáltica
de marca Masterflex L/S. Tanto el valor de la carga
orgánica como el valor del TDH, se seleccionaron
con base en los resultados de experimentos
previos que se han realizado en el Laboratorio de
Saneamiento Ambiental de la Universidad Militar
Nueva Granada.
Análisis de laboratorio
El gas hidrógeno y los demás componentes
de biogás (Nitrógeno y Dióxido de Carbono)
se determinaron por cromatografía de gases
utilizando un detector TCD en un cromatógrafo
de marca GC-Agilent 7890ª, usando el Argón
como gas de arrastre y una columna capilar tipo
Carboxen 1010 plot (longitud 30m, diámetro
interno 0,32mm, capa interna de fase estacionaria
25μm). La cuantificación de biogás para cada uno
de los reactores se realizó tres veces por semana
con dos réplicas adicionales.
Ecuaciones 1 y 2 se utilizaron para calcular tanto
la conversión de sacarosa como la producción de
ácidos volátiles totales durante el proceso.
Porcentaje de conversión de sacarosa
En la cual S0 es la concentración de sacarosa en el
afluente, y Sf es la concentración de sacarosa en
el efluente.
Porcentaje de producción ácidos volátiles totales.
En la cual AVT0 es la concentración de ácidos volátiles totales en el afluente, y AVTf es la concentración de ácidos volátiles totales en el efluente.
La concentración de Ácidos Volátiles Totales (AVT), Alcalinidad, Sólidos Suspendidos Totales (SST), Sólidos Suspendidos Volátiles (SSV), Azúcares, Demanda Química de Oxígeno (DQO) y pH se midieron siguiendo las metodologías descritas en Ripley LE et al. [27] y APHA [28]. Los ensayos se realizaron tres veces por semana para el afluente y los efluentes de los reactores R1 .Todos los datos fueron analizados por medio de la estadística descriptiva y un análisis ANOVA con un nivel de significancia ρ < 0,05 utilizando el software ORIGIN PRO 8.0.
Configuración de los reactores y estabilidad
en la producción de hidrógeno
En el reactor R1 se obtuvo un promedio de producción
de hidrógeno similar al del reactor R2, 45 ± 3% y
48 ±15%. La Figura 2 muestra que los datos del R1 y
R2 son cercanos al valor medio indicando estabilidad
en el proceso. Sin embargo, en el reactor R2 se
observa un valor de producción de hidrógeno más
bajo que el reactor R1 (8%), el cual correspondió al
primer día de operación. Lo anterior puede indicar
que la configuración del R2 y la estrategia utilizada
para generar inóculo favorece la producción rápida
del gas hidrógeno. Sin embargo, otros factores como
el pH inicial y la concentración del sustrato también
pueden intervenir en la producción de hidrógeno
y la composición del biogás [29], por lo cual estos
fueron fijados previamente de acuerdo a los estudios
mencionados anteriormente.
Se observó la presencia de otros gases tales como
el dióxido de carbono y nitrógeno. Para el reactor
R1, la producción promedio de dióxido de carbono y
nitrógeno fue de 44±8% y 11±8%, respectivamente;
mientras que para el reactor R2, la producción de
dióxido de carbono y nitrógeno fue de 30±11% y
22±11%, respectivamente. Vale la pena mencionar
que durante la operación de los reactores no hubo
presencia de metano.
Comparación de la producción de hidrógeno
en los reactores
En la Tabla 1 se muestran las producciones de
hidrógeno ya reportadas previamente por otros
autores que realizaron investigaciones similares.
Muchas de estas investigaciones han sido
realizadas aplicando técnicas de inoculación
complejas que pueden acarrear mayores costos;
así mismo, el uso de materiales para la fijación de
masa como la arcilla o los nanotubos de carbón
pueden contribuir a la explotación y consumo de
recursos de difícil acceso.
La producción de hidrógeno en este estudio en el reactor R1 (Neumático triturado) fue parcialmente menor a la obtenida por Lima DM y Zaiat M [30], debido a que estos aplicaron una concentración menor de sustrato, por lo que se puede afirmar que utilizar concentraciones altas de sustrato puede inhibir la producción de hidrógeno, tal observación fue también citada por Van Ginkel SW y Logan B [32]. Para reactores tipo UASB, Álzate-Gaviria LM et al. [17] y Mohammadi P et al. [18] reportaron un promedio de producción de hidrógeno similar al obtenido en esta investigación, sin embargo se destaca que el rendimiento del reactor R2 fue mejor, debido a que en la inoculación de éste se utilizó un proceso natural y sencillo; adicional a esto, también se evitó aplicar recirculación durante la operación del reactor tal y como lo realizó Mohammadi P et al. [18]. Por otro lado, la producción hidrógeno obtenida se asemeja más a la producción de hidrógeno obtenida por Kisielewska M et al. [31], aun cuando éste aplica una carga orgánica y un TDH mayor a los utilizados en este estudio.
Producción de ácidos volátiles totales
En este estudio, se considera que la producción
de ácidos volátiles totales para los reactores R1 y
R2 fue estable durante los 35 días de operación.
En la Figura 3 se muestra que en ambos reactores
la concentración de AVT del efluente fue mayor al
90%. A pesar que la producción de AVT fue alta, la
producción de hidrógeno no superó el 50% para
ninguno de los dos sistemas, indicando que no
siempre la presencia de ácidos volátiles conlleva a
optimizar la producción de hidrógeno. Un estudio
realizado por Cardeña R et al. [33], indican que
producciones altas de ácidos volátiles inhiben la
producción de hidrógeno, estos autores observaron
valores de producción de hidrógeno entre 77 y
87% y valores de AVT entre 21 y 51%, por lo que
concluyeron que valores bajos de AVT contribuyen
al alto rendimiento en la producción de hidrógeno.
Esta misma observación la indican autores como
Trad Z et al. [34]. Por lo cual, regular la producción
de AVT en los reactores anaerobios utilizados para
producción de hidrógeno puede ser un indicador
para mejorar la estabilidad y rendimiento.
Conversión de sacarosa
La Figura 4 muestra la producción de hidrógeno
y la conversión de sacarosa para el reactor R1 y
R2 respectivamente. El promedio de sacarosa
utilizado en el afluente fue de 5630mg/L. Los
resultados indican una conversión de sacarosa
en ambos reactores. Según Barca C et al. [1]
los sustratos basados en glucosa y sacarosa
para producción de hidrógeno mostraron mayor
eficiencia de conversión que las aguas residuales
domésticas y los carbohidratos complejos.
Esto debido a que los azúcares simples
como la glucosa y la sacarosa son fácilmente
biodegradables, mientras que la fermentación de
carbohidratos complejos como el almidón, celulosa
y hemicelulosa entre otros, se enfrentan a una
primera etapa de hidrólisis a monosacáridos antes
de ser utilizado para la producción de H2 [10].
En el reactor R1 (Neumático triturado) se observó
un promedio de conversión de sacarosa de 55 ±
10% con un porcentaje de producción de H2 de
45%. El reactor R2 (Anillos de biopack) presentó
un promedio de conversión de sacarosa de 41 ±
11%, y de producción de hidrógeno 48%. Autores
como Barros et al. [6], observaron una conversión
de glucosa estable del 90% en reactores de
biomasa fluidizada con neumático triturado en
tiempos de detención hidráulica de 2, 4, 6 y 8h y en
reactores de biomasa fluidizada con material PET
del 90% en tiempos de detención hidráulica de 6
y 8h. Barca et al. [1], indica rangos de conversión
de sustratos de 22% a 100% para reactores de
biomasa fija, y de 7% a 100% para reactores de
biomasa fluidizada.
Los mayores porcentajes de conversión de
sacarosa en el R1 fueron 70 y 69% en el día 7 y
24 de operación, sin embargo, los porcentajes de
producción de H2 para estos mismos días fueron
los más bajos, a saber 41 y 44%, respectivamente.
El mayor porcentaje de conversión en el R2 fue de
63% en el día 13 de operación con una producción
de H2 de 53%. A partir este día, el R2 presentó
comportamiento estable en la conversión de
sacarosa y la producción H2. Fontes DM y Zaiat
M [30] reportan un comportamiento similar en un
reactor de biomasa fija con material de soporte
en polietileno de baja densidad a los 23 días de
operación; definen este comportamiento como el
final de la fase transitoria y el comienzo de la fase
estable.
Test ANOVA
El análisis de varianza (ANOVA) para los datos
experimentales de producción de hidrógeno se
presenta en la Tabla 2. La hipótesis de igualdad
fue comprobada por los valores de probabilidad
(ρ). El valor de ρ encontrado es mayor al nivel de
significancia de 0,05, lo que sugiere que los promedios
de la producción de hidrógeno en los reactores
analizados no presentan diferencias significativas,
con un 95% de confiabilidad. Lo anterior indica que
en la configuración no influyó en la producción de
hidrógeno que se obtuvo en el estudio.
En este estudio se encontró que la configuración de los reactores no ejerce una influencia directa en la producción de hidrógeno operando con TDH de 12h y un valor de carga volumétrica de 11,26gDQO/L.d. Adicionalmente, se observó que con una producción cercana al 90% de AVT, la producción de hidrógeno no supera el 50 % para ninguno de los casos. La presencia inmediata de hidrógeno en los primeros días de operación del reactor tipo UASB-Híbrido puede ser atribuida a las modificaciones que se realizaron al material de fijación y a la estrategia de inoculación. Lo anterior permite abrir la posibilidad de utilizar reactores UASB no solo para la producción de metano sino para la producción de otro tipo de energía renovable como el hidrógeno.
Los autores agradecen a la Vicerrectoría de Investigaciones de la Universidad Militar Nueva Granada por la financiación del proyecto ING 1756 - 2015 y al grupo de investigación de tratamiento de agua por brindar la oportunidad de generar conocimientos.
[1] Barca C, Audrey S, Ranava D, Giudici-Orticoni MT, Ferrasse JH. Anaerobic biofilm reactors for dark fermentative hydrogen production from wastewater: A review. Bioresour. Technol. 2015;185:386-98.
[2] Reinders M, Beckhaus P, Illing F, Misz U, Riße H, Schroder M, et al. Biogas as a source for producing hydrogen at wastewater treatment plants e EuWaK e A pilot project. Int J Hydrogen Energy. 2015;40(28):8601-6.
[3] Pisutpaisal N, Chananchida N, Sirisukpoka U. Biological Hydrogen and Methane Production in from Food Waste in Two-stage CSTR. Energy Procedia. 2014;50:719-22.
[4] Shen Y, Linville JL, Demirtas MU, Mintz MM, Snyder SW. An overview of biogas production and utilization at full-scale wastewater treatment plants (WWTPs) in the United States: Challenges and opportunities towards energy-neutral WWTPs. Renew. Sustainable Energy Rev. 2015;50:346-62.
[5] Cakir FY, Stenstrom MK. Greenhouse gas production: A comparison between aerobic and anaerobic wastewater treatment technology. Water Res. 2005;39(17):4197-203.
[6] Barros AR, Tallarico MA, Sakamoto IK, Maintinguer SI, Amâncio MB, Silva EL. Performance evaluation and phylogenetic characterization of anaerobic fluidized bed reactors using ground tire and pet as support materials for biohydrogen production. Bioresour. Technol. 2011;102(4):3840-7.
[7] Kapdan IK, Kargi F. Bio-hydrogen production from waste materials. Enzym. Microb. Technol. 2006;38(5):569-82.
[8] Das D, Veziroglu TN. Hydrogen production by biological process: a survey of literature. International Journal of Hydrogen Energy. 2001;26(1):13-28.
[9] Nath K, Das D. Improvement of fermentative hydrogen production: various approaches. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2004;65(5):520-9.
[10] Show KY, Lee DJ, Chang JS. Bioreactor and process design for biohydrogen production. Bioresour. Technol. 2011;102(18):8524-33.
[11] Lin CY, Lay CH, Sen B, Chu C, Kumar G, Chen C, Chang J. Fermentative hydrogen production from wastewaters: a review and prognosis. Int. J. Hydrogen Energy. 2012;37(20):15632-642.
[12] Jung K, Kim D, Kim S, Shin H. Bioreactor design for continuous dark fermentative hydrogen production. Bioresour. Technol. 2011;102(18):8612-20.
[13] Li WW, Yu HQ. Biohydrogen Production with high-rate bioreactors. En: Biofuels. Pandey A, Larroche CI, Ricke SC, Dussap CG, Gnansounou E, editors. Estados Unidos: Elsevier Inc. Academic Press; 2011.p. 537-67.
[14] Yu H, Zhu Z, Hu W, Zhang H. Hydrogen production from rice winery wastewater in an upow anaerobic reactor by using mixed anaerobic cultures. Int J Hydrogen Energy. 2002;27(11-12):1359-65.
[15] Chang FY, Lin CY. Biohydrogen production using an up-flow anaerobic sludge blanket reactor. Int J Hydrogen Energy. 2004;29(1):33- 9.
[16] Nunes Ferraz ADJ, Zaiat M, Gupta M, Elbeshbishy E, Hafez H, Nakhla G. Impact of organic loading rate on biohydrogen production in an up-flow anaerobic packed bed reactor (UAnPBR). Bioresour. Technol. 2014;164:371- 9.
[17] Alzate-Gaviria LM, Sebastian PJ, Pérez- Hernández A, Eapen D. Comparison of two anaerobic systems for hydrogen production from the organic fraction of municipal solid waste and synthetic wastewater. Int J Hydrogen Energy. 2007;32(15):3141-6.
[18] Mohammadi P, Ibrahim S. High-rate fermentative hydrogen production from palm oil mill effluent in an up-flow anaerobic sludge blanket-fixed film reactor. Chemical Engineering Research and Design. 2014;92(10):1811-7.
[19] Si B, Li J, Li B, Zhu Z, Shen R, Zhang Y, et al. The role of hydraulic retention time on controlling methanogenesis and homoacetogenesis in biohydrogen production using upflow anaerobic sludge blanket (UASB) reactor and packed bed reactor (PBR). Int J Hydrogen Energy. 2015;40(35):11414-21.
[20] I.N.V.E-123. Análisis granulométrico por tamizado. Bogotá, Colombia: Instituto Nacional de vías (INVIAS); 2007.
[21] Carminato VM. Influência do cálcio na produção biológica de hidrogênio a partir de águas residuárias em biorreatores anaeróbios (tesis maestria). São Paulo, Brasil: Escola de Engenharia de São Carlos, da Universidade de São Paulo; 2013.
[22] Mendez AA, Hernández DM, Torres YV, Chaparro AT. Influencia del medio de soporte en la producción de biohidrógeno a partir del tratamiento de aguas residuales de la industria cervecera utilizando reactores de biomasa inmovilizada y flujo ascendente (Informe Colciencias). Bogotá, Colombia: Universidad Militar Nueva Granada; 2015.
[23] Leite JAC, Fernandes BS, Pozzi E, Barboza M, Zaiat M. Application of an anaerobic packed-bed bioreactor for the production of hydrogen and organic acids. Int. J. Hydrogen Energy. 2008;33(2):579-86.
[24] Hafez H, Nakhla G, Naggar MHE, Elbeshbishy E, Baghchehsaraee B. Effect of organic loading on a novel hydrogen bioreactor. Int J Hydrogen Energy. 2010;35(1):81-92.
[25] Wei J, Liu ZT, Zhang X. Biohydrogen production from starch wastewater and application in fuel cell. Int J Hydrogen Energy. 2010;35(7):2949- 52.
[26] Mohan SV, Babu VL, Sarma PN. Anaerobic biohydrogen production from dairy wastewater treatment in sequencing batch reactor (AnSBR): effect of organic loading rate. Enzyme Microb. Technol. 2007;41(4):506-15.
[27] Ripley LE, Boyle WC, Converse JC. Improved alkalimietric monitoring for anaerobic digestion of high-strength wastes. J Water Pollut Control Fed. 1986;58(5):406-11.
[28] APHA. Standard methods for the examination for water and wastewater. 20th ed. Washington, DC, Estados Unidos: American Public Health Association/American Water Works Association/ Water Environmental Federation; 1998.
[29] Van Ginkel S, Sung S, lay J. Biohydrogen Production as a Function of pH and Substrate Concentration. Environ. Sci. Technol. 2001;35(24):4726-30.
[30] Lima DM, Zaiat M. The influence of the degree of back-mixing on hydrogen production in an anaerobic fixed-bed reactor. Int J Hydrogen Energy. 2012;37(12):9630-5.
[31] Kisielewska M, Debowski M, Zielinski M. Improvement of biohydrogen production using a reduced pressure fermentation. Bioprocess Biosyst Eng. 2015;38(10):1925-33.
[32] Van Ginkel SW, Logan B. Increased biological hydrogen production with reduced organic loading. Water Res. 2005;39(16):3819-26.
[33] Cardeña R, Moreno G, Valdez-Vazquez I, Buitrón G. Optimization of volatile fatty acids concentration for photofermentative hydrogen production by a consortium. Int J Hydrogen Energy. 2015;40(48):17212-23.
[34] Trad Z, Akimbomi J, Vial C, Larroche C, Taherzadeh MJ , Fontaine JP. Development of a submerged anaerobic membrane bioreactor for concurrent extraction of volatile fatty acids and biohydrogen production. Bioresour. Technol. 2015;196:290-300.