Vol. 29 Núm. 1 (2016): Revista ION
Artículos

Evaluación del potencial acidogénico para producción de AGV de melaza de la industria azucarera como valorización de este subproducto

María Angélica Palomino
Facultad de Ingeniería Ambiental. Universidad Antonio Nariño
María Fernanda Ortegón
Facultad de Ingeniería Ambiental. Universidad Santo Tomás
Tatiana Rojas Betancourt
Facultad de Ingeniería Ambiental. Universidad Antonio Nariño
Julián Martínez
Facultad de Ingeniería Ambiental. Universidad Antonio Nariño
Juan Valderrama
Facultad de Ingeniería Ambiental. Universidad Antonio Nariño
Rafael Barragán
Facultad de Ingeniería Ambiental. Universidad Santo Tomás
Aníbal Pérez
Facultad de Ingeniería Ambiental. Universidad Antonio Nariño
Héctor Luna Wandurraga
Facultad de Ingeniería Ambiental. Universidad Antonio Nariño

Publicado 2016-07-15

Palabras clave

  • Digestión Anaerobia,
  • Grado de Acidificación Neto,
  • Ácidos Grasos Volátiles,
  • Biorefinerias,
  • Melaza de Caña de Azúcar.

Cómo citar

Palomino, M. A., Ortegón, M. F., Betancourt, T. R., Martínez, J., Valderrama, J., Barragán, R., Pérez, A., & Luna Wandurraga, H. (2016). Evaluación del potencial acidogénico para producción de AGV de melaza de la industria azucarera como valorización de este subproducto. Revista ION, 29(1). https://doi.org/10.18273/revion.v29n1-2016006

Resumen

Se evaluó el potencial acidogénico de la melaza de la industria azucarera en 4 diferentes OLR (6,02±4,33;13,96±7,11; 15,81±4,83; 26,94±13,27kgDQO/m3.d) en un reactor de fujo ascendente, con lodo granular.El sistema no contó con control de pH e inhibición de la fase metanogénica. El reactor operó en continuo durante 148 días. Para evaluar el potencial acidogénico se utilizó el grado de acidifcación neto (GAn). Los resultados mostraron que durante las tres primeras OLR el %GAn (29,46 ± 13,01; 20,23 ± 13,67; 24,63 ± 19,49) se mantuvo sin diferencias signifcativas, pero para la mayor OLR el %GAn disminuyó a la tercera parte (10,21 ± 7,14), mientras la concentración de AGV fue la mayor para esta fase (2644,89mgDQO/L), además se avaluó el balance de DQO para cada una de las fases, donde el % de AGV en el efuente representó el porcentaje orgánico fermentable rápidamente en el efuente, estos valores indican que con una recirculación interna se podría mejorar el %GAn u obtener otra serie de productos de base biológica para el aprovechamiento de este residuo. En este artículo se utilizó un reactor de fujo ascendente como alternativa a los estudiados (CSRT y batch) presentando diferentes resultados. 

 

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Referencias

[1] Silva FC, Serafim LS, Nadáis H, Arroja L, Cápela I. Acidogenic fermentation towards valorisation of organic waste streams into volatile fatty acids. Chem Biochem Eng Q. 2013;11(4):467–76.

[2] Pavlostathis SG, Giraldo-Gomez E. Kinetics of anaerobic treatment. Water Sci Technol. 1991;24:35–59.

[3] Bastidas-Oyanedel J-R, Bonk F, Thomsen MH, Schmidt JE. Dark fermentation biorefinery in the present and future (bio)chemical industry. Rev Environ Sci Bio/Technology. 2015;14(3):473–98.

[4] Demirbas A. Biorefineries: Current activities and future developments. Energy Convers Manag. 2009;50(11):2782–801.

[5] Reddy CSK, Ghai R, Rashmi, Kalia VC. Polyhydroxyalkanoates: an overview. Bioresour. Technol. 2003;87(2):137–46.

[6] Lee SY, Park JH, Jang SH, Nielsen LK, Kim J, Jung KS. Fermentative butanol production by clostridia. Biotechnol Bioeng. 2008;101(2):209–28.

[7] Hong C, Haiyun W. Optimization of volatile fatty acid production with co-substrate of food wastes and dewatered excess sludge using response surface methodology. Bioresour. Technol. 2010;101(14):5487–93.

[8] Dahiya S, Sarkar O, Swamy YV, Venkata Mohan S. Acidogenic fermentation of food waste for volatile fatty acid production with cogeneration of biohydrogen. Bioresour. Technol. 2015;182:103–13.

[9] Lim S-J, Kim BJ, Jeong C-M, Choi J, Ahn YH, Chang HN. Anaerobic organic acid production of food waste in once-a-day feeding and drawing-off bioreactor. Bioresour. Technol. 2008;99(16):7866–74.

[10]Gameiro T, Sousa F, Silva FC, Couras C, Lopes M, Louros V, et al. Olive oil mill wastewater to volatile fatty acids: statistical study of the acidogenic process. Water, Air, Soil Pollut. 2015;226(4):115-28.

[11] Bertin L, Lampis S, Todaro D, Scoma A, Vallini G, Marchetti L, et al. Anaerobic acidogenic digestion of olive mill wastewaters in biofilm reactors packed with ceramic filters or granular activated carbon. Water Res. 2010;44(15):4537–49.

[12]Marino-Marmolejo EN, Corbalá-Robles L, Cortez-Aguilar RC, Contreras-Ramos SM, Bolaños-Rosales RE, Davila-Vazquez G. Tequila vinasses acidogenesis in a UASB reactor with Clostridium predominance. Springerplus. 2015;4(1):419.

[13]Vergine P, Sousa F, Lopes M, Silva F, Gameiro T, Nadais H, et al. Synthetic soft drink wastewater suitability for the production of volatile fatty acids. Process Biochem. 2015;50(8):1308–12.

[14]Cardona Echavarría AC, Mora Martínez AL, Marín Montoya M. Identificación molecular de bacterias productoras de polihidroxialcanoatos en subproductos de lácteos y caña de azúcar. Rev Fac Nac Agron. 2013;66(2):7129–40.

[15]Asocaña. Informe anual de Asocaña 2011- 2012. Asocaña. Colombia; 2012;1–104.

[16]Asocaña. Aspectos Generales del Sector Azucarero El dulce sabor del 2013-2014. Colombia; 2014;116.

[17]Albuquerque MGE, Eiroa M, Torres C, Nunes BR, Reis MAM. Strategies for the development of a side stream process for polyhydroxyalkanoate (PHA) production from sugar cane molasses. J. Biotechnol. 2007;130(4) 411–21.

[18]Zehnder AJB, Huser BA, Brock TD, Wuhrmann K. Characterization of an acetate-decarboxylating, non-hydrogenoxidizing methane bacterium. Arch Microbiol. 1980;124:1–11.

[19]Field J. Medición de parámetros en reactores del manto de lodos anaeróbicos de flujo ascendente, Universidad Agrícola de Wageningen Holanda En: Universidad del Valle, Corporación Autónoma Regional del Cauca, Universidad Agrícola de W ageningen. Arranque y operación de sistema de flujo ascendente con manto de lodos UASB. Santiago de Cali: Universidad del Valle; 1987.

[20]APHA, AWWA, and WEF. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater 21st ed. Washington D.C.: American Public Health Association; 2005.