Palabras clave
Oviposición
monitoreo
vigilancia poblacional
control de mosquitos
monitoreo
vigilancia poblacional
control de mosquitos
Cómo citar
Ruiz, N., Rincón, G. A., Parra, H. J., & Duque, J. E. (2018). Dinámica de oviposición de Aedes (Stegomyia) aegypti (Diptera: Culicidae), estado gonadotrófico y coexistencia con otros culícidos en el área Metropolitana de Bucaramanga, Colombia. Salud UIS, 50(4), 311–321. https://doi.org/10.18273/revsal.v50n4-2018004
Resumen
Introducción: Las zonas urbanas tropicales favorecen la presencia de Aedes aegypti en el continente americano. Otros culícidos pueden compartir la misma área de distribución con este mosquito, lo cual justifica que se deban monitorear. Objetivo: Conocer la dinámica de oviposición de A. aegypti, evaluar su estado gonadotrófico y determinar taxonómicamente la presencia de otros culícidos en el área metropolitana de Bucaramanga. Metodología: Para este propósito fueron instaladas trampas de oviposición (N=960) cebadas con infusión de heno (10%) durante un año en cuatro localidades (Norte, Girón, Piedecuesta y Floridablanca). Las ovitrampas permanecieron instaladas durante cinco días en intradomicilio y peridomicilio, paralelamente se colectaron larvas en plantas como bromelias y depósitos de agua en cada lugar de colecta. En el mes de mayo de 2014 fueron capturadas con un aspirador eléctrico y trampas StegTrap hembras de A. aegypti y Cx. quinquefasciatus a las cuales se les estimó su estado gonadotrófico. Datos ambientales como precipitación y temperatura fueron correlacionados con índices de oviposición. Resultados: Se obtuvieron 25.254 huevos de A. aegypti (Girón 39,1%, Bucaramanga 36,8% Floridablanca 15,2% y Piedecuesta 8,9%) en general los índices de oviposición fueron mayores en peridomicilio con correlaciones positivas (> 0,5) entre los índices NOP, NH e IPO en peridomicilio y IPO y IDH en intradomicilio con la precipitación y la humedad. En cuanto al estado gonotrófico se determinó que las hembras de A. aegypti presentaron hasta dos ciclos gonadotróficos en las áreas examinadas. En las colectas activas en peridomicilio se encontró, Culex spissipes, Culex quinquefasciatus, Limatus durhamii, Toxorhynchites spp y Wyeomyia davisi. Conclusión: A. aegypti fue presente en todas localidades y se reportan otros culícidos potenciales vectores en el área metropolitana.
Referencias
1. Rozo-Lopez P, Mengual X. Updated list of the mosquitoes of Colombia (Diptera: Culicidae). Biodivers Data J. 2015; 3: e4567. doi: 10.3897/BDJ.3.e4567.
2. Thiberville SD, Moyen N, Dupuis-Maguiraga L, Nougairede A, Gould EA, Roques P, et al. Chikungunya fever: Epidemiology, clinical syndrome, pathogenesis and therapy. Antiviral Res. 2013; 99(3): 345-370. doi: 10.1016/j.antiviral.2013.06.009.
3. Guzman MG, Halstead SB, Artsob H, Buchy P, Farrar J, Gubler DJ, et al. Dengue : a continuing global threat. Nat Rev Microbiol. 2010; 8(12Suppl): S7-16. doi: 10.1038/nrmicro2460.
4. Caglioti C, Lalle E, Castilletti C, Carletti F, Capobianchi MR, Bordi L. Chikungunya virus infection: an overview. New Microbiol. 2013; 36(3): 211-227.
5. Duque JE, Navarro-Silva M, Trejos D. Simulando manejo de Aedes aegypti (Diptera : Culicidae) y sus efectos en una epidemia de dengue. Rev Col Entomol. 2009; 35(1): 66-72.
6. Olano VA, Matiz MI, Lenhart A, Cabezas L, Vargas SL, Jaramillo JF, et al. Schools as Potential Risk Sites for Vector-Borne Disease Transmission: Mosquito Vectors in Rural Schools in Two Municipalities in Colombia. J Am Mosq Control Assoc. 2015; 31(3): 212-222. doi: 10.2987/moco-31-03-212-222.1.
7. Méndez F, Barreto M, Arias JF, Rengifo G, Muñoz J, Burbano ME, et al. Human and mosquito infections by dengue viruses during and after epidemics in a dengue-endemic region of Colombia. Am J Trop Med Hyg. 2006; 74(4): 678-683.
8. Villar LÁ. Dengue : un reto para el estado, la comunidad científica y el conjunto de la sociedad colombiana. Infect. 2011; 15(1): 5-7.
9. Gubler DJ. Dengue and Dengue Hemorrhagic Fever. 1998;11(3): 480-496.
10. Achee NL, Gould F, Perkins TA, Reiner RC, Morrison AC, Ritchie SA, et al. A Critical Assessment of vector control for dengue prevention. PLoS Negl Trop Dis. 2015; 9(5): e0003655. doi: 10.1371/journal.pntd.0003655.
11. Goindin D, Delannay C, Ramdini C, Gustave J, Fouque F. Parity and longevity of Aedes aegypti according to temperatures in controlled conditions and consequences on dengue transmission risks. PLoS One. 2015; 10(8): 1-21. doi: 10.1371/journal.pone.0135489.
12. Lima-Camara TN, Honório NA, Lourenço-de-Oliveira R. Parity and ovarian development of Aedes aegypti and Ae. albopictus (Diptera: Culicidae) in metropolitan Rio de Janeiro. J Vector Ecol. 2007; 32(1): 34-40. doi: https://doi.org/10.3376/1081-1710(2007)32[34:PAODOA]2.0.CO;2.
13. Ocazionez-Jiménez R, Ortiz-Báez AS, Gómez-Rangel SY, Miranda-Esquivel DR. Virus del dengue de serotipo 1 (DENV-1) de Colombia: su contribución a la presentación del dengue en el departamento de Santander. Biomédica. 2013; 33: 22-30. doi: http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v33i0.717.
14. Cáceres-Manrique FM, Angulo-Silva ML, Vesga-Gómez C. Eficacia de la movilización y la participación social para la apropiación o “empoderamiento” (sic .) (empowerment) de las medidas de control del dengue, Comuna Norte,
Bucaramanga, 2008-2009. Biomedica. 2010; 30(4): 539-550.
15. Reiter P. Oviposition, dispersal, and survival in Aedes aegypti: implications for the efficacy of control strategies. Vector-Borne Zoonotic Dis. 2007;7(2): 261-273. doi: 10.1089/vbz.2006.0630.
16. Fantinatti EC, Duque JEL, Silva A, Navarro-Silva M. Abundância e Agregação de Ovos de Aedes aegypti L . Aedes albopictus (Skuse) ( Diptera: Culicidae ) no Norte e Noroeste do Paraná. Neotrop Entomol. 2007; 36(6): 960-965. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S1519-566X2007000600020.
17. de Resende MC, de Ázara TMF, Costa IO, Heringer LC, de Andrade MR, Acebal JL, et al. Field optimisation of mosquiTRAP sampling for monitoring Aedes aegypti Linnaeus (Diptera: Culicidae). Mem Inst Oswaldo Cruz. 2012; 107(3):
294-302. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762012000300002.
18. Honório NA, Codeço CT, Alves FC, Magalhães MAFM, Lourenço-de-Oliveira R. Temporal Distribution of Aedes aegypti in different districts of Rio de Janeiro, Brazil, measured by two types of traps. J Med Entomol. 2009; 46(5): 1001-1014.
19. Gomes ADC. Vigilância Entomológica. Inf Epidemiológico do Sist Único Saúde. 2002; 11(2): 79-90.
20. Miyazaki RD, Ribeiro ALM, Pignatti MG, Júnior JHC, Pignati M. Monitoramento do mosquito Aedes aegypti (Linnaeus , 1762) (Diptera: Culicidae), por meio de ovitrampas no Campus da Universidade Federal de Mato Grosso, Cuiabá, Estado de Mato Grosso. Rev Soc Bras Med Trop. 2009; 42(4): 392-397. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0037-86822009000400007.
21. Forttini O. Identificação, biologia e epidemiologia. Culicidologia Médica. V2 ed. Universidade de Sao Paulo. 2002; 851 p.
22. Belkin J, Schick R, Heinemann SJ. Contributions of American the Entomological Institute. Vol. 7, Mosquito studies. 1971; 1-67 p. 23. Cova Garcia P, Sutil E, Rausseo JA. Mosquitos (Culicinos) de Venezuela. 1966; 245 p.
24. Torres JP, Aranda MN, Moreno HJP, Duque JE. Design and construction of a trap for the surveillance of Aedes (Stegomyia) aegypti. Rev Univ Ind Santander. 2016; 48(3): 285-294. doi: http://dx.doi.org/10.18273/revsal.v48n3-2016002.
25. Macdonald G, Detinova T, Bertram D. Course in advanced entomological techniques applied to malaria eradication. London; 1959.
26. Charlwood J, Rafael J, Wilkes T. Métodos de determinar a idade fisiológica em Diptera de importância médica. Uma revisão com especial referência aos vetores de doenças na América do Sul. Acta Amaz. 1980; 10(2): 311-333. doi: http://
dx.doi.org/10.1590/1809-43921980102311.
27. Ruiz-López F, González-Mazo A, Vélez-Mira A, Gómez GF, Zuleta L, Uribe S, et al. Presencia de Aedes (Stegomyia) aegypti (Linnaeus, 1762) y su infección natural con el virus del dengue en alturas no registradas para Colombia. Biomédica. 2016; 36(2): 303-308. doi: https://doi.org/10.7705/biomedica.v36i2.3301.
28. Alarcón ÉP, Segura ÁM, Rúa-Uribe G, Parra-Henao G. Evaluación de ovitrampas para vigilancia y control de Aedes aegypti en dos centros urbanos del Urabá antioqueño. Biomédica. 2014; 34: 409-424. doi: https://doi.org/10.7705/biomedica.v34i3.2134.
29. Codeço CT, Lima AWS, Araújo SC, Lima JBP, Maciel-de-Freitas R, Honório NA, et al. Surveillance of Aedes aegypti: Comparison of House Index with Four Alternative Traps. PLoS Negl Trop Dis. 2015; 9(2): 1-23. doi: 10.1371/journal.pntd.0003475.
30. Sivagnaname N, Gunasekaran K. Need for an efficient adult trap for the surveillance of dengue vectors. Indian J Med Res. 2012;136: 739-749.
31. Romero-Vivas CME, Falconar AKI. Investigation of relationships between Aedes aegypti egg, larvae, pupae, and adult density indices where their main breeding sites were located indoors. J Am Mosq Control Assoc. 2005; 21(1): 15-21.
doi: 10.2987/8756-971X(2005)21[15:IORBAA]2.0.CO;2.
32. Estallo EL, Ludueña-Almeida FF, Introini M V, Zaidenberg M, Almirón WR. Weather variability associated with Aedes (Stegomyia) aegypti (Dengue Vector) oviposition dynamics in Northwestern Argentina. PLoS One. 2015; 10(5): 1-11. doi:
10.1371/journal.pone.0127820.
33. Micieli MV, Campos RE. Oviposition Activity and Seasonal Pattern of a Population of Aedes (Stegomyia) aegypti (L.) (Diptera: Culicidae) in Subtropical Argentina. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2003; 98(5): 659-663.
34. Casas-Martínez M, Orozco-Bonilla A, Muñoz-Reyes M, Ulloa-García A, Bond JG, Valle-Mora J, et al. A new tent trap for monitoring the daily activity of Aedes aegypti and Aedes albopictus. J Vector Ecol. 2013; 38(2): 277-288. doi: 10.1111/j.1948-7134.2013.12041.x.
35. Chadee DD, Martinez R. Landing periodicity of Aedes aegypti with implications for dengue transmission in Trinidad, West Indies. J vector Ecol. 2000; 25(2): 158-163.
36. Fávaro EA, Dibo MR, Mondini A, Ferreira AC, Barbosa AAC, Eiras ÁE, et al. Physiological state of Aedes (Stegomyia) aegypti mosquitoes captured with MosquiTRAPs in Mirassol, São Paulo, Brazil. J Vector Ecol. 2006; 31(2): 285-291.
37. Maciel-De-Freitas R. A review on the ecological determinants of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) Vectorial Capacity. Oecologia Austral. 2010; 14(3): 726-736. doi: 10.4257/oeco.2010.1403.08.
38. Ball TS, Ritchie SR. Sampling Biases of the BGSentinel Trap With Respect to Physiology, Age, and Body Size of Adult Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). J Med Entomol. 2010; 47(4): 649-656.
39. Barata EAMF, Costa AIP, Chiaravalloti-Neto F, Barata JMS, Natal D. População de Aedes aegypti (l.) em área endêmica de dengue, Sudeste do Brasil. Rev Saude Publica. 2001; 35(3): 237-242. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0034-89102001000300004.
40. Forattini OP, Marques GRAM. Nota sobre o encontro de Aedes aegypti em bromélias. Rev Saude Publica. 2000; 34(5): 543-544. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0034-89102000000500016.
41. Cunha SP, Alves JRC, Lima MM, Duarte JR, Barros LC De, Silva JL Da, et al. Presença de Aedes aegypti em Bromeliaceae e depósitos com plantas no Município do Rio de Janeiro, RJ. Rev Saude Publica. 2002; 36(2): 244-245. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0034-89102002000200018.
42. Oliveira VC de, Almeida Neto LC de. Ocorrência de Aedes aegypti e Aedes albopictus em bromélias cultivadas no Jardim Botânico Municipal de Bauru, São Paulo, Brasil. Cad Saude Publica. 2017; 33(1): 1-7. doi: http://dx.doi.org/10.1590/0102-311x00071016.
43. Calderón O, Troyo A, Solano M. Diversidad larval de mosquitos (Diptera: Culicidae) en contenedores artificiales procedentes de una comunidad urbana de San José, Costa Rica. Parasitol Latinoam. 2004; 59(3-4): 132-136.
44. Rodríguez RM, Ríos MD, Álvarez Gutiérrez Y, Calderón Arguedas O. Sitios de cria de Aedes aegypti (Linnaeus) y distribución geográfica de Aedes albopictus (Skuse) en la provincia de Limón, Costa Rica. Rev Cubana Med Trop. 2014; 66(2): 219-227.
45. Liria J. Fauna fitotelmata en las bromelias Aechmea fendleri André y Hohenbergia stellata Schult del Parque Nacional San Esteban, Venezuela. Rev Peru Biol. 2007; 14(1): 33-38.
46. Barajas J, Suaza J, Torres C, Rua G, Uribe S, Porter C. Mosquitos (Diptera: Culicidae) asociados a guadua en los municipios de Anserma, Hispania y Jardín, Colombia. Rev Colomb Entomol. 2013; 39(1): 132-140.
47. Guedes DR, Paiva MH, Donato MM, Barbosa PP, Krokovsky L, Rocha SW dos S, et al. Zika virus replication in the mosquito Culex quinquefasciatus in Brazil. Emerg Microbes Infect. 2017; 6(8): e69. doi: 10.1038/emi.2017.59.
2. Thiberville SD, Moyen N, Dupuis-Maguiraga L, Nougairede A, Gould EA, Roques P, et al. Chikungunya fever: Epidemiology, clinical syndrome, pathogenesis and therapy. Antiviral Res. 2013; 99(3): 345-370. doi: 10.1016/j.antiviral.2013.06.009.
3. Guzman MG, Halstead SB, Artsob H, Buchy P, Farrar J, Gubler DJ, et al. Dengue : a continuing global threat. Nat Rev Microbiol. 2010; 8(12Suppl): S7-16. doi: 10.1038/nrmicro2460.
4. Caglioti C, Lalle E, Castilletti C, Carletti F, Capobianchi MR, Bordi L. Chikungunya virus infection: an overview. New Microbiol. 2013; 36(3): 211-227.
5. Duque JE, Navarro-Silva M, Trejos D. Simulando manejo de Aedes aegypti (Diptera : Culicidae) y sus efectos en una epidemia de dengue. Rev Col Entomol. 2009; 35(1): 66-72.
6. Olano VA, Matiz MI, Lenhart A, Cabezas L, Vargas SL, Jaramillo JF, et al. Schools as Potential Risk Sites for Vector-Borne Disease Transmission: Mosquito Vectors in Rural Schools in Two Municipalities in Colombia. J Am Mosq Control Assoc. 2015; 31(3): 212-222. doi: 10.2987/moco-31-03-212-222.1.
7. Méndez F, Barreto M, Arias JF, Rengifo G, Muñoz J, Burbano ME, et al. Human and mosquito infections by dengue viruses during and after epidemics in a dengue-endemic region of Colombia. Am J Trop Med Hyg. 2006; 74(4): 678-683.
8. Villar LÁ. Dengue : un reto para el estado, la comunidad científica y el conjunto de la sociedad colombiana. Infect. 2011; 15(1): 5-7.
9. Gubler DJ. Dengue and Dengue Hemorrhagic Fever. 1998;11(3): 480-496.
10. Achee NL, Gould F, Perkins TA, Reiner RC, Morrison AC, Ritchie SA, et al. A Critical Assessment of vector control for dengue prevention. PLoS Negl Trop Dis. 2015; 9(5): e0003655. doi: 10.1371/journal.pntd.0003655.
11. Goindin D, Delannay C, Ramdini C, Gustave J, Fouque F. Parity and longevity of Aedes aegypti according to temperatures in controlled conditions and consequences on dengue transmission risks. PLoS One. 2015; 10(8): 1-21. doi: 10.1371/journal.pone.0135489.
12. Lima-Camara TN, Honório NA, Lourenço-de-Oliveira R. Parity and ovarian development of Aedes aegypti and Ae. albopictus (Diptera: Culicidae) in metropolitan Rio de Janeiro. J Vector Ecol. 2007; 32(1): 34-40. doi: https://doi.org/10.3376/1081-1710(2007)32[34:PAODOA]2.0.CO;2.
13. Ocazionez-Jiménez R, Ortiz-Báez AS, Gómez-Rangel SY, Miranda-Esquivel DR. Virus del dengue de serotipo 1 (DENV-1) de Colombia: su contribución a la presentación del dengue en el departamento de Santander. Biomédica. 2013; 33: 22-30. doi: http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v33i0.717.
14. Cáceres-Manrique FM, Angulo-Silva ML, Vesga-Gómez C. Eficacia de la movilización y la participación social para la apropiación o “empoderamiento” (sic .) (empowerment) de las medidas de control del dengue, Comuna Norte,
Bucaramanga, 2008-2009. Biomedica. 2010; 30(4): 539-550.
15. Reiter P. Oviposition, dispersal, and survival in Aedes aegypti: implications for the efficacy of control strategies. Vector-Borne Zoonotic Dis. 2007;7(2): 261-273. doi: 10.1089/vbz.2006.0630.
16. Fantinatti EC, Duque JEL, Silva A, Navarro-Silva M. Abundância e Agregação de Ovos de Aedes aegypti L . Aedes albopictus (Skuse) ( Diptera: Culicidae ) no Norte e Noroeste do Paraná. Neotrop Entomol. 2007; 36(6): 960-965. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S1519-566X2007000600020.
17. de Resende MC, de Ázara TMF, Costa IO, Heringer LC, de Andrade MR, Acebal JL, et al. Field optimisation of mosquiTRAP sampling for monitoring Aedes aegypti Linnaeus (Diptera: Culicidae). Mem Inst Oswaldo Cruz. 2012; 107(3):
294-302. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762012000300002.
18. Honório NA, Codeço CT, Alves FC, Magalhães MAFM, Lourenço-de-Oliveira R. Temporal Distribution of Aedes aegypti in different districts of Rio de Janeiro, Brazil, measured by two types of traps. J Med Entomol. 2009; 46(5): 1001-1014.
19. Gomes ADC. Vigilância Entomológica. Inf Epidemiológico do Sist Único Saúde. 2002; 11(2): 79-90.
20. Miyazaki RD, Ribeiro ALM, Pignatti MG, Júnior JHC, Pignati M. Monitoramento do mosquito Aedes aegypti (Linnaeus , 1762) (Diptera: Culicidae), por meio de ovitrampas no Campus da Universidade Federal de Mato Grosso, Cuiabá, Estado de Mato Grosso. Rev Soc Bras Med Trop. 2009; 42(4): 392-397. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0037-86822009000400007.
21. Forttini O. Identificação, biologia e epidemiologia. Culicidologia Médica. V2 ed. Universidade de Sao Paulo. 2002; 851 p.
22. Belkin J, Schick R, Heinemann SJ. Contributions of American the Entomological Institute. Vol. 7, Mosquito studies. 1971; 1-67 p. 23. Cova Garcia P, Sutil E, Rausseo JA. Mosquitos (Culicinos) de Venezuela. 1966; 245 p.
24. Torres JP, Aranda MN, Moreno HJP, Duque JE. Design and construction of a trap for the surveillance of Aedes (Stegomyia) aegypti. Rev Univ Ind Santander. 2016; 48(3): 285-294. doi: http://dx.doi.org/10.18273/revsal.v48n3-2016002.
25. Macdonald G, Detinova T, Bertram D. Course in advanced entomological techniques applied to malaria eradication. London; 1959.
26. Charlwood J, Rafael J, Wilkes T. Métodos de determinar a idade fisiológica em Diptera de importância médica. Uma revisão com especial referência aos vetores de doenças na América do Sul. Acta Amaz. 1980; 10(2): 311-333. doi: http://
dx.doi.org/10.1590/1809-43921980102311.
27. Ruiz-López F, González-Mazo A, Vélez-Mira A, Gómez GF, Zuleta L, Uribe S, et al. Presencia de Aedes (Stegomyia) aegypti (Linnaeus, 1762) y su infección natural con el virus del dengue en alturas no registradas para Colombia. Biomédica. 2016; 36(2): 303-308. doi: https://doi.org/10.7705/biomedica.v36i2.3301.
28. Alarcón ÉP, Segura ÁM, Rúa-Uribe G, Parra-Henao G. Evaluación de ovitrampas para vigilancia y control de Aedes aegypti en dos centros urbanos del Urabá antioqueño. Biomédica. 2014; 34: 409-424. doi: https://doi.org/10.7705/biomedica.v34i3.2134.
29. Codeço CT, Lima AWS, Araújo SC, Lima JBP, Maciel-de-Freitas R, Honório NA, et al. Surveillance of Aedes aegypti: Comparison of House Index with Four Alternative Traps. PLoS Negl Trop Dis. 2015; 9(2): 1-23. doi: 10.1371/journal.pntd.0003475.
30. Sivagnaname N, Gunasekaran K. Need for an efficient adult trap for the surveillance of dengue vectors. Indian J Med Res. 2012;136: 739-749.
31. Romero-Vivas CME, Falconar AKI. Investigation of relationships between Aedes aegypti egg, larvae, pupae, and adult density indices where their main breeding sites were located indoors. J Am Mosq Control Assoc. 2005; 21(1): 15-21.
doi: 10.2987/8756-971X(2005)21[15:IORBAA]2.0.CO;2.
32. Estallo EL, Ludueña-Almeida FF, Introini M V, Zaidenberg M, Almirón WR. Weather variability associated with Aedes (Stegomyia) aegypti (Dengue Vector) oviposition dynamics in Northwestern Argentina. PLoS One. 2015; 10(5): 1-11. doi:
10.1371/journal.pone.0127820.
33. Micieli MV, Campos RE. Oviposition Activity and Seasonal Pattern of a Population of Aedes (Stegomyia) aegypti (L.) (Diptera: Culicidae) in Subtropical Argentina. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2003; 98(5): 659-663.
34. Casas-Martínez M, Orozco-Bonilla A, Muñoz-Reyes M, Ulloa-García A, Bond JG, Valle-Mora J, et al. A new tent trap for monitoring the daily activity of Aedes aegypti and Aedes albopictus. J Vector Ecol. 2013; 38(2): 277-288. doi: 10.1111/j.1948-7134.2013.12041.x.
35. Chadee DD, Martinez R. Landing periodicity of Aedes aegypti with implications for dengue transmission in Trinidad, West Indies. J vector Ecol. 2000; 25(2): 158-163.
36. Fávaro EA, Dibo MR, Mondini A, Ferreira AC, Barbosa AAC, Eiras ÁE, et al. Physiological state of Aedes (Stegomyia) aegypti mosquitoes captured with MosquiTRAPs in Mirassol, São Paulo, Brazil. J Vector Ecol. 2006; 31(2): 285-291.
37. Maciel-De-Freitas R. A review on the ecological determinants of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) Vectorial Capacity. Oecologia Austral. 2010; 14(3): 726-736. doi: 10.4257/oeco.2010.1403.08.
38. Ball TS, Ritchie SR. Sampling Biases of the BGSentinel Trap With Respect to Physiology, Age, and Body Size of Adult Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). J Med Entomol. 2010; 47(4): 649-656.
39. Barata EAMF, Costa AIP, Chiaravalloti-Neto F, Barata JMS, Natal D. População de Aedes aegypti (l.) em área endêmica de dengue, Sudeste do Brasil. Rev Saude Publica. 2001; 35(3): 237-242. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0034-89102001000300004.
40. Forattini OP, Marques GRAM. Nota sobre o encontro de Aedes aegypti em bromélias. Rev Saude Publica. 2000; 34(5): 543-544. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0034-89102000000500016.
41. Cunha SP, Alves JRC, Lima MM, Duarte JR, Barros LC De, Silva JL Da, et al. Presença de Aedes aegypti em Bromeliaceae e depósitos com plantas no Município do Rio de Janeiro, RJ. Rev Saude Publica. 2002; 36(2): 244-245. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0034-89102002000200018.
42. Oliveira VC de, Almeida Neto LC de. Ocorrência de Aedes aegypti e Aedes albopictus em bromélias cultivadas no Jardim Botânico Municipal de Bauru, São Paulo, Brasil. Cad Saude Publica. 2017; 33(1): 1-7. doi: http://dx.doi.org/10.1590/0102-311x00071016.
43. Calderón O, Troyo A, Solano M. Diversidad larval de mosquitos (Diptera: Culicidae) en contenedores artificiales procedentes de una comunidad urbana de San José, Costa Rica. Parasitol Latinoam. 2004; 59(3-4): 132-136.
44. Rodríguez RM, Ríos MD, Álvarez Gutiérrez Y, Calderón Arguedas O. Sitios de cria de Aedes aegypti (Linnaeus) y distribución geográfica de Aedes albopictus (Skuse) en la provincia de Limón, Costa Rica. Rev Cubana Med Trop. 2014; 66(2): 219-227.
45. Liria J. Fauna fitotelmata en las bromelias Aechmea fendleri André y Hohenbergia stellata Schult del Parque Nacional San Esteban, Venezuela. Rev Peru Biol. 2007; 14(1): 33-38.
46. Barajas J, Suaza J, Torres C, Rua G, Uribe S, Porter C. Mosquitos (Diptera: Culicidae) asociados a guadua en los municipios de Anserma, Hispania y Jardín, Colombia. Rev Colomb Entomol. 2013; 39(1): 132-140.
47. Guedes DR, Paiva MH, Donato MM, Barbosa PP, Krokovsky L, Rocha SW dos S, et al. Zika virus replication in the mosquito Culex quinquefasciatus in Brazil. Emerg Microbes Infect. 2017; 6(8): e69. doi: 10.1038/emi.2017.59.
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